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水稻茉莉酸和细胞分裂素信号相关基因及QTLqSB-11LE的抗纹枯病功能和机理研究

摘要第3-6页
Abstract第6-9页
符号说明第14-16页
第一章 文献综述第16-58页
    1.1 水稻纹枯病研究进展第16-26页
        1.1.1 水稻纹枯病第16-25页
            1.1.1.1 水稻纹枯病特征第16-19页
                1.1.1.1.1 水稻纹枯病症状第16-17页
                1.1.1.1.2 水稻纹枯病病原物第17-18页
                1.1.1.1.3 水稻纹枯病病害循环第18-19页
                1.1.1.1.4 发病因素第19页
            1.1.1.2 纹枯病菌的致病机制第19-22页
                1.1.1.2.1 机械穿透作用第19-20页
                1.1.1.2.2 化学致病作用第20-22页
            1.1.1.3 水稻抗纹枯病机理第22-25页
                1.1.1.3.1 被动抗病性第22-23页
                1.1.1.3.2 主动抗病性第23-25页
        1.1.2 抗纹枯病QTL定位与克隆进展第25-26页
    1.2 水稻抗纹枯病转基因育种研究第26-30页
        1.2.1 抗真菌蛋白基因第26-29页
            1.2.1.1 几丁质酶基因第26-27页
            1.2.1.2 β-1,3-葡聚糖酶基因第27页
            1.2.1.3 病程相关蛋白第27-28页
            1.2.1.4 多聚半乳糖酵酸酶抑制蛋白第28页
            1.2.1.5 其他第28-29页
        1.2.2 植物激素途径相关基因第29-30页
    1.3 植物抗病机制第30-54页
        1.3.1 植物免疫机制第30-33页
            1.3.1.1 病原物相关分子模式触发的免疫(PTI)第31-32页
            1.3.1.2 效应子触发的免疫(ETI)第32页
            1.3.1.3 系统获得性抗性(SAR)第32-33页
        1.3.2 植物抗病性第33-37页
            1.3.2.1 NBS-LRR类抗性基因第35-36页
            1.3.2.2 STK/PK类抗性基因第36页
            1.3.2.3 LRR-TM类抗性基因第36页
            1.3.2.4 其他类抗性基因第36-37页
        1.3.3 植物激素在抗病中的作用第37-47页
            1.3.3.1 水杨酸第37-39页
            1.3.3.2 乙烯第39-42页
            1.3.3.3 茉莉酸第42-44页
            1.3.3.4 其他激素第44-46页
            1.3.3.5 各激素在防卫反应中的交叉互作第46-47页
        1.3.4 CK对腐生型病原菌的抗性研究第47-54页
            1.3.4.1 细胞分裂素的生物合成与代谢第48-50页
            1.3.4.2 细胞分裂素的信号转导途径第50-52页
            1.3.4.3 细胞分裂素与其他激素间的交叉互作第52-54页
    1.4 本研究目的和意义第54-58页
        1.4.1 病程相关基因OsOSM1在水稻抗纹枯病分子育种中的应用研究第54-55页
        1.4.2 提高水稻细胞分裂素含量增强水稻纹枯病抗性的研究第55-56页
        1.4.3 抗病QTLqSB-11~(LE)的功能分析第56-58页
第二章 材料和方法第58-65页
    2.1 实验材料第58页
        2.1.1 供试水稻材料第58页
        2.1.2 菌株与质粒第58页
        2.1.3 酶与各种生化试剂第58页
        2.1.4 所用引物第58页
    2.2 实验方法第58-65页
        2.2.1 系统发生树分析第58-59页
        2.2.2 病原菌接种方法第59-60页
        2.2.3 激素处理第60-61页
        2.2.4 植物表达载体的构建第61页
        2.2.5 质粒DNA的制备第61-62页
            2.2.5.1 感受态细胞的制备第61-62页
            2.2.5.2 质粒的转化第62页
            2.2.5.3 质粒的提取第62页
        2.2.6 农杆菌介导的遗传转化第62页
        2.2.7 DNA提取和PCR分析第62页
        2.2.8 RNA提取、反转录和qRT-PCR分析第62页
        2.2.9 亚细胞定位第62页
            2.2.9.1 烟草注射异源表达蛋白第62页
            2.2.9.2 水稻原生质体表达蛋白第62页
        2.2.10 乙烯释放率测定第62-63页
        2.2.11 水稻还原性氧ROS的检测第63页
        2.2.12 细胞分裂素测定第63页
        2.2.13 叶绿素含量测定第63页
        2.2.14 台盼蓝染色第63-64页
        2.2.15 农艺性状考查第64页
        2.2.16 转录组测序分析第64页
        2.2.17 数据分析第64-65页
第三章 结果分析第65-100页
    3.1 超表达OsOSMl可提高水稻对纹枯病的抗性第65-74页
        3.1.1 水稻中osmotin的生物信息学分析第65-67页
        3.1.2 在抗病品种中OsOSM1的表达受纹枯病诱导第67-68页
        3.1.3 超表达OsOSM1提高水稻对纹枯病的抗性第68-69页
        3.1.4 适当增强OsOSM1表达不影响水稻的正常发育和产量形成第69-71页
        3.1.5 OsOSM1定位在质膜上第71-72页
        3.1.6 OsOSM1参与JA信号调控途径第72-74页
    3.2 提高细胞分裂素含量可显著增强水稻对纹枯病的抗性第74-86页
        3.2.1 外源喷施细胞分裂素类物质可减轻纹枯病病情第74-75页
        3.2.2 内源提高细胞分裂素水平的转基因材料的获得第75-77页
        3.2.3 提高内源CK含量可增强水稻对纹枯病的抗性第77-79页
        3.2.4 降低CK含量明显增强水稻对纹枯病的感病性第79-81页
        3.2.5 一个与CK信号相关的滞绿突变体可提高水稻对纹枯病的抗性第81-86页
    3.3 水稻抗纹枯病QTLqSB-11~(LE)的克隆和功能分析第86-100页
        3.3.1 qSB-11~(LE)的克隆第86-90页
        3.3.2 ORF10在水稻自然品种群体中的序列变异分析第90-91页
        3.3.3 ORF10的表达模式第91-92页
        3.3.4 ORF10的亚细胞定位第92-93页
        3.3.5 ORF10-RNAi转基因系的转录组分析第93-95页
        3.3.6 ORF10参与ET介导的抗病信号途径的研究第95-97页
        3.3.7 ORF10参与水稻已知PAMPs因子诱导的PTI信号途径的研究第97-100页
第四章 讨论第100-108页
    4.1 OsOSM1在水稻抗纹枯病分子育种中的应用价值第100-101页
    4.2 增加CK含量提高纹枯病抗性是可行的第101-104页
        4.2.1 调节CK合成和降解途径相关基因能够提高水稻对纹枯病的抗性第101-102页
        4.2.2 通过筛选高CK含量的水稻自然种质可加速水稻抗纹枯病育种进展第102-103页
        4.2.3 CK含量增加对纹枯病的抗性机制第103-104页
    4.3 ORF10的克隆、抗病功能及抗病信号传导途径第104-108页
        4.3.1 ORF10的克隆及抗病功能第104-106页
        4.3.2 ORF10的抗病信号传导途径第106-108页
全文结论第108-109页
参考文献第109-131页
附录第131-147页
    附录1 本论文中所用引物引物第131-133页
    附录2 改进后的0-9级纹枯病病级评价标准第133-134页
    附录3 大肠杆菌化转感受态细胞的制备第134页
    附录4 农杆菌电转感受态细胞的制备第134-135页
    附录5 大肠杆菌化学转化法第135页
    附录6 农杆菌电击转化法第135页
    附录7 质粒的提取第135-136页
    附件8 农杆菌介导的遗传转化的流程第136-137页
    附录9 CTAB法提取水稻叶片总DNA第137-138页
    附录10 Trizol法提取水稻总RNA第138页
    附录11 烟草注射异源表达蛋白第138-139页
    附录12 水稻原生质体表达蛋白第139-140页
    附录13 乙烯释放率测定第140页
    附录14 水稻还原性氧ROS的检测第140-142页
    附件15 水稻中35个含有thaumatin结构域的基因的信息第142-145页
    附录16 进行ORF10测序的82份水稻种质信息第145-147页
致谢第147-148页
博士研究生期间(待)发表的论文第148-149页

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