| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 第一章 RI-1对MSH2缺陷结直肠癌细胞的杀伤作用 | 第12-26页 |
| 1.1 实验材料 | 第12-16页 |
| 1.1.1 细胞株 | 第12页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 1.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第13-15页 |
| 1.1.4 细胞培养耗材 | 第15页 |
| 1.1.5 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-21页 |
| 1.2.1 实验前准备 | 第16页 |
| 1.2.2 细胞培养 | 第16-18页 |
| 1.2.3 MTT法检测RI-1对结直肠癌细胞的作用 | 第18页 |
| 1.2.4 免疫印迹(Western-blot)检测MSH2蛋白的表达 | 第18-20页 |
| 1.2.5 细胞凋亡实验 | 第20-21页 |
| 1.2.6 统计学方法 | 第21页 |
| 1.3 实验结果 | 第21-24页 |
| 1.3.1 MSH2表达水平不同结直肠癌细胞对RI-1敏感性的差异 | 第21-22页 |
| 1.3.2 MSH2缺陷与野生型结直肠癌细胞对RI-1敏感性的差异 | 第22-23页 |
| 1.3.3 RI-1增加MSH2缺陷结直肠癌细胞的凋亡率 | 第23-24页 |
| 1.4 讨论 | 第24-26页 |
| 第二章 RI-1对MSH2差异表达结直肠癌细胞杀伤作用 | 第26-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第26页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第27页 |
| 2.1.4 细胞培养耗材 | 第27页 |
| 2.1.5 主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 操作前准备 | 第28页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第28页 |
| 2.2.3 MTT法检测RI-1对结直肠癌细胞的作用 | 第28-29页 |
| 2.2.4 免疫印迹(Western-blot)检测MSH2蛋白的表达 | 第29-30页 |
| 2.2.5 病毒感染 | 第30-31页 |
| 2.2.6 TUNEL实验 | 第31-32页 |
| 2.2.7 统计学方法 | 第32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-35页 |
| 2.3.1 敲降HT29细胞MSH2蛋白表达 | 第32-33页 |
| 2.3.2 敲降MSH2可增加细胞对RI-1的敏感性 | 第33-34页 |
| 2.3.3 改变MSH2表达水平可影响RI-1处理后结直肠癌细胞凋亡率 | 第34-35页 |
| 2.4 讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 RI-1对MSH2缺陷结直肠癌细胞内DNA损伤影响 | 第37-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第37-39页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第37页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.3 主要试剂缓冲液的配置 | 第38页 |
| 3.1.4 细胞培养耗材 | 第38页 |
| 3.1.5 主要仪器设备 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 操作前准备 | 第39页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第39页 |
| 3.2.3 彗星实验(单细胞凝胶电泳实验) | 第39-40页 |
| 3.2.4 免疫荧光实验 | 第40页 |
| 3.2.5 统计学方法 | 第40-41页 |
| 3.3 实验结果 | 第41-45页 |
| 3.3.1 RI-1增加MSH2低表达结直肠癌细胞内DNA断裂 | 第41-43页 |
| 3.3.2 RI-1可增加MSH2低表达结直肠癌细胞γ-H2AX foci的形成 | 第43-45页 |
| 3.4 讨论 | 第45-46页 |
| 结论与展望 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 综述 | 第50-58页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 缩略词表 | 第58-59页 |
| 在读期间发表的论文 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
