| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第21-43页 |
| 1.1 引言 | 第21-23页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第21-22页 |
| 1.1.2 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 1.1.3 项目来源 | 第23页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第23-39页 |
| 1.2.1 油橄榄叶的化学成分 | 第23-25页 |
| 1.2.2 橄榄苦苷及其提取物加工方法 | 第25-27页 |
| 1.2.3 HT及其衍生物的合成 | 第27-36页 |
| 1.2.4 橄榄多酚的生物活性 | 第36-38页 |
| 1.2.5 脂质体制备及性能 | 第38-39页 |
| 1.2.6 羟基酪醇制剂开发现状 | 第39页 |
| 1.3 研究目标和主要研究内容 | 第39-41页 |
| 1.3.1 研究目标 | 第39-40页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第40-41页 |
| 1.4 创新点 | 第41页 |
| 1.5 研究技术路线 | 第41-43页 |
| 第二章 橄榄苦苷提取物酶法制备羟基酪醇的工艺研究 | 第43-52页 |
| 2.1 引言 | 第43-44页 |
| 2.2 材料与方法 | 第44-46页 |
| 2.2.1 材料 | 第44页 |
| 2.2.2 主要试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第45-46页 |
| 2.2.4 数据处理和统计方法 | 第46页 |
| 2.3 结果与分析 | 第46-51页 |
| 2.3.1 HT和OL的标准曲线 | 第46-47页 |
| 2.3.2 降解橄榄苦苷提取物的酶种类筛选 | 第47-48页 |
| 2.3.3 橄榄苦苷提取物-1（OLE-1）酶解单因素试验 | 第48-50页 |
| 2.3.4 橄榄苦苷提取物-1（OLE-1）酶解正交试验 | 第50-51页 |
| 2.3.5 化学降解和酶解制备HT的差异 | 第51页 |
| 2.4 小结 | 第51-52页 |
| 第三章 橄榄苦苷提取物的酶解机制和酚类产物化学成分研究 | 第52-70页 |
| 3.1 引言 | 第52页 |
| 3.2 材料与方法 | 第52-56页 |
| 3.2.1 材料 | 第52-53页 |
| 3.2.2 主要试剂及仪器 | 第53页 |
| 3.2.3 试验方法 | 第53-55页 |
| 3.2.4 数据处理和统计方法 | 第55-56页 |
| 3.3 结果与分析 | 第56-68页 |
| 3.3.1 橄榄苦苷提取物、酶解物及分级萃取物的关键多酚含量分析 | 第56-58页 |
| 3.3.2 橄榄苦苷提取物酶解前后关键多酚HPLC图谱 | 第58-59页 |
| 3.3.3 Py-GC-MS分析OLE-2、EH-2 和EEEH-2 的裂解产物 | 第59-63页 |
| 3.3.4 乙酸乙酯萃取物-2（EEEH-2）关键多酚的HPLC分析 | 第63-65页 |
| 3.3.5 酶解机制初探 | 第65-68页 |
| 3.4 小结 | 第68-70页 |
| 第四章 酚类产物中羟基酪醇的分离纯化工艺研究 | 第70-89页 |
| 4.1 引言 | 第70页 |
| 4.2 材料与方法 | 第70-76页 |
| 4.2.1 材料 | 第70-71页 |
| 4.2.2 主要试剂及仪器 | 第71页 |
| 4.2.3 试验方法 | 第71-75页 |
| 4.2.4 数据处理和统计方法 | 第75-76页 |
| 4.3 结果与分析 | 第76-88页 |
| 4.3.1 不同树脂对乙酸乙酯萃取物-1（EEEH-1）的静态饱和吸附效果 | 第76-77页 |
| 4.3.2 不同树脂对乙酸乙酯萃取物-1（EEEH-1）的静态吸附动力学 | 第77-78页 |
| 4.3.3 不同样品浓度对大孔树脂吸附乙酸乙酯萃取物-1（EEEH-1）影响 | 第78-79页 |
| 4.3.4 不同浓度洗脱液对乙酸乙酯萃取物-1（EEEH-1）的静态解吸效果 | 第79页 |
| 4.3.5 不同树脂对乙酸乙酯萃取物-1（EEEH-1）的动态吸附效果 | 第79-83页 |
| 4.3.6 高速逆流色谱分离HT树脂解附物的研究 | 第83-87页 |
| 4.3.7 大孔树脂解附物大样的纯化结果 | 第87-88页 |
| 4.4 小结 | 第88-89页 |
| 第五章 羟基酪醇酚类产物的热分解动力学及稳定性研究 | 第89-117页 |
| 5.1 引言 | 第89页 |
| 5.2 材料与方法 | 第89-92页 |
| 5.2.1 材料 | 第89-90页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第90页 |
| 5.2.3 试验方法 | 第90-92页 |
| 5.2.4 数据处理和统计方法 | 第92页 |
| 5.3 结果与分析 | 第92-115页 |
| 5.3.1 HT的TG-DTG热重分析 | 第92-94页 |
| 5.3.2 HT的热分解动力学分析 | 第94-102页 |
| 5.3.3 HT贮存期的推断 | 第102页 |
| 5.3.4 酶解物的TG-DTG热重分析 | 第102-104页 |
| 5.3.5 酶解物的热分解动力学分析 | 第104-114页 |
| 5.3.6 HT与酶解物热稳定性的相互关系 | 第114-115页 |
| 5.4 小结 | 第115-117页 |
| 第六章 酚类产物的抗氧化活性及构效关系研究 | 第117-133页 |
| 6.1 引言 | 第117页 |
| 6.2 材料与方法 | 第117-121页 |
| 6.2.1 材料 | 第117-118页 |
| 6.2.2 主要试剂及仪器 | 第118页 |
| 6.2.3 试验方法 | 第118-121页 |
| 6.2.4 数据处理和统计方法 | 第121页 |
| 6.3 结果与分析 | 第121-132页 |
| 6.3.1 酚类产物对DPPH自由基的清除作用 | 第121-123页 |
| 6.3.2 酚类产物对ABTS自由基的清除作用 | 第123-125页 |
| 6.3.3 酚类产物的总还原能力 | 第125-127页 |
| 6.3.4 酚类产物的铁离子还原能力（FRAP） | 第127-128页 |
| 6.3.5 酚类产物的Fe2+螯合能力 | 第128-129页 |
| 6.3.6 橄榄苦苷提取物、酶解物及分级萃取物对DPPH自由基清除作用 | 第129-130页 |
| 6.3.7 酚类产物的化学结构和抗氧化性的构效关系 | 第130-132页 |
| 6.4 小结 | 第132-133页 |
| 第七章 酚类产物的抑菌活性及构效关系研究 | 第133-144页 |
| 7.1 引言 | 第133页 |
| 7.2 材料与方法 | 第133-136页 |
| 7.2.1 材料 | 第133-134页 |
| 7.2.2 主要试剂及仪器 | 第134页 |
| 7.2.3 试验方法 | 第134-136页 |
| 7.2.4 数据处理和统计方法 | 第136页 |
| 7.3 结果与分析 | 第136-139页 |
| 7.3.1 酚类产物对五种菌株的抑菌作用 | 第136-139页 |
| 7.3.2 酚类产物抗氧化性和抑菌性的相关性分析 | 第139页 |
| 7.3.3 酚类产物的化学结构和抑菌性的构效关系 | 第139页 |
| 7.4 小结 | 第139-144页 |
| 第八章 羟基酪醇（HT）脂质体的制备及性质研究 | 第144-159页 |
| 8.1 引言 | 第144页 |
| 8.2 材料与方法 | 第144-148页 |
| 8.2.1 材料 | 第144页 |
| 8.2.2 主要试剂及仪器 | 第144-145页 |
| 8.2.3 试验方法 | 第145-147页 |
| 8.2.4 数据处理和统计方法 | 第147-148页 |
| 8.3 结果与分析 | 第148-158页 |
| 8.3.1 HT脂质体制备的单因素试验 | 第148-151页 |
| 8.3.2 HT脂质体制备的响应面试验 | 第151-155页 |
| 8.3.3 HT脂质体平均粒度大小及分布 | 第155页 |
| 8.3.4 HT脂质体的稳定性 | 第155-157页 |
| 8.3.5 HT脂质体的缓释性 | 第157页 |
| 8.3.6 HT脂质体对DPPH自由基的清除作用 | 第157-158页 |
| 8.4 小结 | 第158-159页 |
| 第九章 结论与展望 | 第159-165页 |
| 9.1 结论 | 第159-163页 |
| 9.2 讨论 | 第163-164页 |
| 9.3 展望 | 第164-165页 |
| 参考文献 | 第165-175页 |
| 附录 | 第175-176页 |
| 在读期间的学术研究 | 第176-178页 |
| 致谢 | 第178页 |
