摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
第一章 前言 | 第9-24页 |
1.1 虾青素 | 第9-14页 |
1.1.1 虾青素的理化性质 | 第9-10页 |
1.1.2 虾青素的生物学功能 | 第10页 |
1.1.3 虾青素的性质和功能 | 第10-12页 |
1.1.4 虾青素的主要来源 | 第12-14页 |
1.2 雨生红球藻 | 第14-19页 |
1.2.1 雨生红球藻概述 | 第14页 |
1.2.2 雨生红球藻中虾青素的合成途径 | 第14-15页 |
1.2.3 影响雨生红球藻中虾青素的积累因素 | 第15-18页 |
1.2.4 利用雨生红球藻生产虾青素的研究现状 | 第18-19页 |
1.3 代谢组学研究进展 | 第19-22页 |
1.3.1 代谢组学概念的提出 | 第19-20页 |
1.3.2 代谢组学的研究方法 | 第20-21页 |
1.3.3 代谢组学研究在微生物中的应用 | 第21-22页 |
1.4 本文的研究内容及意义 | 第22-24页 |
1.4.1 研究内容 | 第22页 |
1.4.2 研究意义 | 第22-24页 |
第二章 雨生红球藻NIES 144的环境胁迫实验 | 第24-31页 |
2.1 实验材料 | 第24-25页 |
2.1.1 藻种来源 | 第24页 |
2.1.2 实验仪器 | 第24-25页 |
2.1.3 培养基及常用试剂 | 第25页 |
2.2 实验方法 | 第25-27页 |
2.2.1 雨生红球藻NIES 144的正常培养条件 | 第25-26页 |
2.2.2 雨生红球藻NIES 144的环境胁迫培养条件 | 第26页 |
2.2.3 生物量的测定方法 | 第26-27页 |
2.3 结果与讨论 | 第27-31页 |
2.3.1 胁迫条件对雨生红球藻生长的影响 | 第27-28页 |
2.3.2 胁迫条件对雨生红球藻表观形态的影响 | 第28-29页 |
2.3.3 显微镜观察胁迫条件下的雨生红球藻 | 第29-31页 |
第三章 LC-MS技术测定几种胁迫条件下的虾青素含量 | 第31-37页 |
3.1 实验材料 | 第31-33页 |
3.1.1 藻种来源 | 第31页 |
3.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
3.1.3 培养基及常用试剂 | 第32-33页 |
3.2 实验方法 | 第33-34页 |
3.2.1 虾青素的提取 | 第33页 |
3.2.2 LC-MS技术测定虾青素的含量 | 第33-34页 |
3.3 结果与讨论 | 第34-37页 |
3.3.1 虾青素的离子峰图 | 第34页 |
3.3.2 胁迫条件对生物量与虾青素积累的影响 | 第34-37页 |
第四章 LC-MS技术分析胁迫条件下的雨生红球藻代谢组 | 第37-47页 |
4.1 实验材料 | 第37-38页 |
4.1.1 藻种来源 | 第37页 |
4.1.2 实验仪器 | 第37-38页 |
4.1.3 培养基及常用试剂 | 第38页 |
4.2 实验方法 | 第38-41页 |
4.2.1 样品制备方法 | 第38-39页 |
4.2.2 LC-MS代谢物检测方法 | 第39-40页 |
4.2.3 数据分析及处理 | 第40-41页 |
4.3 结果与讨论 | 第41-47页 |
4.3.1 PCA分析不同胁迫条件下的代谢物变化 | 第41-43页 |
4.3.2 基于LC-MS技术的代谢物定量分析 | 第43-47页 |
第五章 GC-MS技术分析胁迫条件下的雨生红球藻代谢组 | 第47-59页 |
5.1 实验材料 | 第47-48页 |
5.1.1 藻种来源 | 第47页 |
5.1.2 实验仪器和试剂 | 第47-48页 |
5.2 实验方法 | 第48-51页 |
5.2.1 样品制备方法 | 第48-49页 |
5.2.2 GC-MS代谢物检测方法 | 第49-50页 |
5.2.3 数据的处理和分析 | 第50-51页 |
5.3 结果与讨论 | 第51-59页 |
5.3.1 PCA分析不同胁迫条件下的代谢物变化 | 第51-53页 |
5.3.2 PCA分析几种胁迫条件下的差异代谢物 | 第53页 |
5.3.3 WGCNA分析不同胁迫条件下的代谢物变化 | 第53-57页 |
5.3.4 各种胁迫条件下核心代谢物的分析 | 第57-59页 |
第六章 结论与展望 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
发表论文及科研情况 | 第69-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
附表 | 第71-93页 |