| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 缩略语表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第一章 小鼠椎间盘退变动物模型的建立 | 第17-40页 |
| 1 材料和方法 | 第18-28页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 主要试剂及仪器 | 第18-19页 |
| 1.3 实验分组 | 第19页 |
| 1.4 尾部悬吊法构建椎间盘退变动物模型 | 第19-20页 |
| 1.5 小鼠腰椎X线摄片 | 第20页 |
| 1.6 取材方法 | 第20页 |
| 1.7 HE染色步骤 | 第20-22页 |
| 1.8 蛋白印迹(Western-Blotting)试验 | 第22-28页 |
| 1.9 统计学方法 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-29页 |
| 2.1 实验动物一般情况观察 | 第28页 |
| 2.2 小鼠腰椎正侧位X线摄片结果 | 第28页 |
| 2.3 小鼠椎间盘细胞学改变和组织学评分 | 第28-29页 |
| 2.4 椎间盘组织中P27蛋白表达 | 第29页 |
| 3 讨论 | 第29-32页 |
| 4 结论 | 第32-33页 |
| 5 参考文献 | 第33-35页 |
| 6 图表 | 第35-40页 |
| 第二章 p27基因在小鼠椎间盘退变中的作用 | 第40-59页 |
| 1 材料和方法 | 第41-48页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 动物基因型鉴定 | 第41-42页 |
| 1.3 实验步骤 | 第42-43页 |
| 1.4 实验分组 | 第43-44页 |
| 1.5 小鼠腰椎正侧位X线 | 第44页 |
| 1.6 HE染色 | 第44-48页 |
| 1.7 主要观察指标 | 第48页 |
| 1.8 统计学分析 | 第48页 |
| 2 结果 | 第48-49页 |
| 2.1 p27基因敲除小鼠的一般生长情况 | 第48页 |
| 2.2 p27基因敲除小鼠腰椎X线观察 | 第48-49页 |
| 2.3 p27基因敲除小鼠椎间盘HE染色结果观察 | 第49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 4 结论 | 第52-53页 |
| 5 参考文献 | 第53-56页 |
| 6 图表 | 第56-59页 |
| 第三章 p27基因敲除通过激活Shh信号通路发挥椎间盘退变保护作用 | 第59-75页 |
| 1 材料和方法 | 第60-67页 |
| 1.1 实验材料 | 第60页 |
| 1.2 免疫荧光染色 | 第60-61页 |
| 1.3 Western-Blotting | 第61-67页 |
| 1.4 统计学分析 | 第67页 |
| 2 结果 | 第67-68页 |
| 2.1 椎间盘组织中Shh信号通路相关蛋白表达 | 第67页 |
| 2.2 椎间盘组织中Shh信号通路相关蛋白表达含量 | 第67-68页 |
| 3 讨论 | 第68-69页 |
| 4 结论 | 第69-70页 |
| 5 参考文献 | 第70-72页 |
| 6 图表 | 第72-75页 |
| 椎间盘退变动物模型研究进展（综述一） | 第75-89页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 椎间盘退变相关基因多态性研究进展（综述二) | 第89-103页 |
| 参考文献 | 第96-103页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文情况 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104-105页 |
