中文摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-11页 |
英文缩略词表 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
立题依据 | 第14-21页 |
一. 氧对机体的重要性及其研究进展 | 第14-15页 |
二. MSCs 与氧 | 第15页 |
三. 低氧的研究进展 | 第15-19页 |
·干细胞在低氧微环境下分化及携带外源基因能力的研究进展 | 第15-18页 |
·中药对骨髓间充质干细胞分化的进展 | 第18-19页 |
四. 黄芪对 MSCs 的保护抗氧化作用 | 第19-21页 |
·黄芪对 MSCs 的抗氧化作用 | 第19页 |
·黄芪的抗氧化作用 | 第19-21页 |
实验研究 | 第21-32页 |
1. 材料与试剂 | 第21-25页 |
·细胞株 | 第21页 |
·主要试剂 | 第21-22页 |
·主要仪器和设备 | 第22-23页 |
·主要试剂的配置 | 第23-24页 |
·药物配制 | 第24-25页 |
2. 实验方法 | 第25-32页 |
·技术路线图 | 第25页 |
·细胞培养 | 第25-27页 |
·细胞生长周期实验(MTT 比色法) | 第27页 |
·流式细胞术(FCM)检测细胞周期变化 | 第27-28页 |
·向神经细胞的诱导分化 | 第28-29页 |
·线粒体膜电位的检测 | 第29页 |
·Western Blot 方法检测低氧诱导因子 HIF-1α与 NSE、Nestin 蛋白的表达 | 第29-32页 |
·统计学分析 | 第32页 |
结果 | 第32-49页 |
1. 不同氧浓度下各组细胞形态改变 | 第32-34页 |
2. 不同氧浓度细胞生长曲线的变化 | 第34-36页 |
3. 不同氧浓度下各组细胞周期的改变 | 第36-39页 |
4. 细胞线粒体膜电位的变化 | 第39-41页 |
5. 甲苯胺蓝染色检测神经细胞尼氏小体 | 第41-44页 |
6. Western Blot 检测 HIF-1 α、NSE、Nestin 在 MSCs 组中表达 | 第44-49页 |
·HIF-1 α、NSE、Nestin 蛋白表达 | 第44-48页 |
·低氧组 3%O2与 APS+低氧干预组 APS+3%O2的 HIF-1α与 NSE、Nestin 的相关关系 | 第48-49页 |
讨论 | 第49-54页 |
1. 低氧微环境下 MSCs 形态的变化 | 第49页 |
2. 低氧微环境中 MSCs 生长曲线与细胞周期的变化 | 第49-51页 |
3. 低氧微环境中 MSCs 线粒体膜电位的表达 | 第51页 |
4. 向神经细胞的诱导 | 第51-52页 |
5. Western Blot 结果显示 | 第52页 |
6. APS 在低氧微环境中保护 MSCs 的中医理论基础及其作用机制 | 第52-54页 |
·中医理论基础 | 第52-53页 |
·APS 在低氧微环境中保护 MSCs 的作用机制 | 第53-54页 |
结语 | 第54-55页 |
1. 结论 | 第54页 |
2. 问题与展望 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
附录 1 在学期间成果 | 第62-63页 |
附录 2 细胞鉴定证明书 | 第63页 |