| 符号说明 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-40页 |
| ·小麦赤霉病研究进展 | 第14-26页 |
| ·小麦赤霉病发病区域分布 | 第14页 |
| ·小麦赤霉病病原菌的分类地位和形态特征 | 第14-15页 |
| ·小麦赤霉病病原菌的侵染过程 | 第15-16页 |
| ·小麦赤霉病的病害特征 | 第16页 |
| ·小麦赤霉病的病害防治 | 第16-17页 |
| ·禾谷镰刀菌毒素及其对小麦和人畜的毒性 | 第17-18页 |
| ·小麦赤霉病抗病基因的研究 | 第18-26页 |
| ·植物抗病基因研究进展 | 第26-40页 |
| ·植物抗病基因的结构和分类 | 第26-27页 |
| ·植物抗病基因的作用机理 | 第27页 |
| ·利用病毒诱导的基因沉默技术研究植物抗病基因的功能 | 第27-32页 |
| ·植物多聚半乳糖醛酸酶抑制蛋白基因（PGIP）研究进展 | 第32-35页 |
| ·植物 ABC 转运蛋白基因研究进展 | 第35-38页 |
| ·植物蛋白激酶和钙调蛋白基因研究进展 | 第38-40页 |
| 2 材料与方法 | 第40-56页 |
| ·试验材料 | 第40-41页 |
| ·试验材料及其生长条件 | 第40页 |
| ·试验地点 | 第40页 |
| ·菌株和质粒 | 第40页 |
| ·小麦赤霉病鉴定方法 | 第40页 |
| ·酶和生化试剂 | 第40-41页 |
| ·PCR 引物（见附录） | 第41页 |
| ·培养基配制 | 第41页 |
| ·试剂配制 | 第41页 |
| ·试验方法 | 第41-55页 |
| ·植物组织总 RNA 提取 | 第41-42页 |
| ·植物组织小量 DNA 的提取 | 第42页 |
| ·第一链 cDNA 的合成 | 第42-43页 |
| ·DNA 片段的回收纯化 | 第43-44页 |
| ·普通小量质粒的提取 | 第44页 |
| ·高纯度大量质粒的提取 | 第44-45页 |
| ·热击法转化大肠杆菌感受态 | 第45页 |
| ·农杆菌 EHA105 感受态的制备 | 第45-46页 |
| ·冻融法转化农杆菌感受态 | 第46页 |
| ·烟草亚细胞定位载体的构建 | 第46-47页 |
| ·烟草农杆菌法亚细胞定位步骤 | 第47页 |
| ·洋葱基因枪法亚细胞定位步骤 | 第47-49页 |
| ·激光共聚焦显微镜观察亚细胞定位步骤 | 第49页 |
| ·大麦条纹花叶病毒（BSMV）基因沉默载体的构建 | 第49-50页 |
| ·BSMV 病毒诱导的小麦基因沉默 | 第50-51页 |
| ·台盼蓝检测小麦叶片腐生斑 | 第51页 |
| ·生物信息学分析 | 第51-52页 |
| ·3′和 5′RACE | 第52-55页 |
| ·技术路线 | 第55-56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-83页 |
| ·小麦 TaPDS 基因叶部病毒诱导的基因沉默（VIGS）研究 | 第56-57页 |
| ·小麦赤霉病抗性相关基因的分离鉴定和叶部 VIGS 功能研究 | 第57-80页 |
| ·TaPGIP 基因的分离鉴定与叶部 VIGS 功能研究 | 第57-66页 |
| ·TaPDR7 基因的分离鉴定与叶部 VIGS 功能研究 | 第66-75页 |
| ·TaCBRLK 基因的分离鉴定和叶部 VIGS 功能研究 | 第75-80页 |
| ·TaPDS 基因穗部 VIGS 研究 | 第80-81页 |
| ·小麦赤霉病抗性相关基因 TaPGIP 穗部 VIGS 研究 | 第81-83页 |
| 4 讨论 | 第83-90页 |
| ·BSMV-VIGS 在小麦叶部和穗部沉默 TaPDS 基因的体系建立 | 第83-84页 |
| ·利用叶部和穗部 BSMV-VIGS 研究表明 TaPGIP 基因对小麦赤霉病均具有一定抗性 | 第84-86页 |
| ·利用叶部 BSMV-VIGS 研究表明 TaPDR7 基因对小麦赤霉病具有一定抗性 | 第86-88页 |
| ·利用叶部 BSMV-VIGS 研究表明 TaCBRLK 基因对小麦赤霉病具有一定抗性 | 第88-90页 |
| 5 结论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-108页 |
| 附录 1：培养基配方 | 第108-114页 |
| 附录 2：试验中所用引物 | 第114-118页 |
| 致谢 | 第118-120页 |
| 攻读博士学位期间发表论文、会议摘要及待发表论文 | 第120页 |
