| 主要缩略词表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 研究背景 | 第11-15页 |
| ·树突状细胞在免疫应答中的作用 | 第11-13页 |
| ·树突状细胞激活细胞毒性 T 淋巴细胞特异性杀伤肿瘤细胞 | 第13-14页 |
| ·树突状细胞在抗感染免疫中的作用 | 第14-15页 |
| 第二章 G-CSF与GM-CSF对人外周血树突状细胞诱导扩增优化方案的研究 | 第15-26页 |
| ·实验材料 | 第15-16页 |
| ·主要试剂 | 第15-16页 |
| ·主要器具 | 第16页 |
| ·标本来源及实验分组 | 第16页 |
| ·方法 | 第16-19页 |
| ·梯度离心法分离 PB MC | 第16-17页 |
| ·G-CSF与GM-CSF对PBMC的诱导分化 | 第17-18页 |
| ·DC 形态学观察 | 第18页 |
| ·DC 表面表型检测 | 第18页 |
| ·MLR检测 | 第18-19页 |
| ·统计学分析 | 第19页 |
| ·结果 | 第19-25页 |
| ·DC 的形态学采用相差显微镜观察 | 第19-21页 |
| ·细胞表型分析 | 第21-23页 |
| ·DC 功能检测 | 第23-25页 |
| ·讨论 | 第25-26页 |
| ·不同细胞因子对 DC 体外培养的作用 | 第25页 |
| ·两种细胞因子的安全性研究 | 第25-26页 |
| ·结论 | 第26页 |
| 第三章 添加自体血清对树突状细胞体外培养的影响 | 第26-32页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·主要试剂见 2.1.1 | 第27页 |
| ·主要器具见 2.1.2 | 第27页 |
| ·标本来源见 2.1.3 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-28页 |
| ·梯度离心法分离 PBMC见 2.2 | 第27页 |
| ·培养基中添加不同浓度的自体血清 | 第27-28页 |
| ·DC 细胞表型流式细胞仪检测见2.2.4 | 第28页 |
| ·统计分析 | 第28页 |
| ·结果 | 第28-30页 |
| 附录 添加 10 % 自体血清3例DC表面标志表型 | 第30-31页 |
| ·讨论 | 第31页 |
| ·结论 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-36页 |
| 综述 | 第36-49页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 2011级硕士毕业生个人简介 | 第51页 |
