| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第10-13页 |
| 第一部分：文献综述 | 第13-32页 |
| 综述一、神经营养因子对周围神经的修复和再生的作用 | 第13-19页 |
| 参考文献 | 第16-19页 |
| 综述二、TNF-α与DPN | 第19-29页 |
| 1 TNF-α简介 | 第19-20页 |
| 2 TNFR1信号通路 | 第20-21页 |
| 3 TNFR2信号通路 | 第21页 |
| 4 TNFR1和TNFR2信号之间的关系 | 第21页 |
| 5 TNF受体下游传导信号及其机制 | 第21-23页 |
| ·NF-κB激活的信号传导途径 | 第21-22页 |
| ·细胞凋亡的信号通路 | 第22页 |
| ·JNK的信号通路 | 第22-23页 |
| 6 TNF-α加重糖尿病神经功能障碍 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-29页 |
| 综述三、中药对糖尿病周围神经病变NGF和TNF-α的影响 | 第29-32页 |
| 1 中药对糖尿病周围神经病变神经生长因子的影响 | 第29-30页 |
| ·动物实验 | 第29-30页 |
| ·离体细胞实验 | 第30页 |
| 2 中药影响糖尿病周围神经病变的肿瘤坏死因子水平 | 第30页 |
| 参考文献 | 第30-32页 |
| 第二部分：实验研究 | 第32-46页 |
| 目的 | 第32页 |
| 材料与方法 | 第32-37页 |
| 1 实验动物 | 第32页 |
| 2 主要仪器设备 | 第32-33页 |
| 3 实验用药 | 第33页 |
| 4 主要试剂 | 第33页 |
| 5 主要溶液及试剂配制 | 第33-34页 |
| 6 动物模型建立与分组 | 第34页 |
| 7 给药干预方法 | 第34页 |
| 8 标本留取和处理 | 第34-35页 |
| 9 观察一般情况 | 第35页 |
| 10 监测血糖及体重 | 第35页 |
| 11 大鼠机械痛阈值的测定 | 第35页 |
| 12 光镜标本制备 | 第35-36页 |
| 13 免疫组化染色法测定坐骨神经中NGF的表达 | 第36-37页 |
| 14 夹心法酶联免疫吸附测定血清中TNF-α的表达 | 第37页 |
| 统计学处理 | 第37-38页 |
| 结果 | 第38-43页 |
| 1 一般情况的观察 | 第38页 |
| 2 血糖监测结果 | 第38-39页 |
| 3 体重的变化 | 第39-40页 |
| 4 机械痛阈值 | 第40-41页 |
| 5 糖尿病大鼠坐骨神经中NGF表达水平 | 第41-42页 |
| 6 血清TNF-α的表达 | 第42-43页 |
| 讨论 | 第43-46页 |
| 1 采用STZ诱导的糖尿病大鼠模型 | 第43-44页 |
| 2 采用ELISA法测量炎性因子 | 第44-45页 |
| 3 筋脉通对STZ-DM大鼠神经病变的干预作用 | 第45-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 附图 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 简历 | 第54页 |