| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 英文縮略词表 | 第10-12页 |
| 目录 | 第12-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-17页 |
| 第二章 葫芦素B对肿瘤细胞HIF-1α蛋白水平及其靶基因VEGF、EPO表达的影响 | 第17-40页 |
| ·材料 | 第17-19页 |
| ·细胞来源 | 第17页 |
| ·细胞培养的主要试剂 | 第17页 |
| ·细胞培养的主要仪器 | 第17-18页 |
| ·Western Blot主要试剂 | 第18页 |
| ·Western Blot主要仪器 | 第18页 |
| ·PCR主要试剂 | 第18-19页 |
| ·PCR主要仪器 | 第19页 |
| ·免疫共沉淀主要试剂 | 第19页 |
| ·免疫共沉淀主要仪器 | 第19页 |
| ·方法 | 第19-31页 |
| ·细胞培养 | 第19-20页 |
| ·葫芦素B试剂的配置(结构式见图2.2.2) | 第20页 |
| ·通过双荧光素酶报告基因实验检测葫芦素B在缺氧状态下对HIF-1α转录活性的影响 | 第20-21页 |
| ·MTT法检测葫芦素B对细胞增殖的影响 | 第21页 |
| ·Western blot实验 | 第21-27页 |
| ·逆转录聚合酶链式反应 | 第27-30页 |
| ·免疫共沉淀 | 第30页 |
| ·ELISA实验检测HIF-α靶基因VEGF的蛋白表达量 | 第30-31页 |
| ·结果 | 第31-38页 |
| ·双荧光素酶报告基因检测结果 | 第31页 |
| ·MTT实验检测结果 | 第31-32页 |
| ·Western-Blot实验检测结果 | 第32-36页 |
| ·RT-PCR、ELISA实验检测结果 | 第36-37页 |
| ·免疫共沉淀实验检测结果 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| ·结论 | 第39-40页 |
| 第三章 葫芦素B对人宫颈癌细胞HIF-1信号传导通路的影响 | 第40-47页 |
| ·仪器与试剂 | 第40-41页 |
| ·主要仪器设备 | 第40页 |
| ·主要试剂 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-43页 |
| ·Western-Blot实验 | 第41-43页 |
| ·结果 | 第43-45页 |
| ·Western-Blot实验检测结果 | 第43-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| ·结论 | 第46-47页 |
| 第四章 葫芦素B抑制裸鼠体内肿瘤的生长及药物在裸鼠体内各组织中的分布情况 | 第47-57页 |
| ·仪器与试剂 | 第47-48页 |
| ·主要仪器设备 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·动物来源 | 第47-48页 |
| ·方法 | 第48-49页 |
| ·细胞培养及动物造模 | 第48页 |
| ·不同浓度的葫芦素B对裸鼠皮下移植瘤体积及HIF-1α蛋白表达的影响 | 第48页 |
| ·葫芦素B在裸鼠体内组织分布试验 | 第48-49页 |
| ·样品的制备 | 第48-49页 |
| ·色谱条件的确立 | 第49页 |
| ·线性关系考察 | 第49页 |
| ·精密度考察 | 第49页 |
| ·结果 | 第49-56页 |
| ·不同浓度的葫芦素B对裸鼠皮下移植瘤体积及HIF-1α蛋白表达的结果 | 第49-51页 |
| ·葫芦素B在裸鼠组织中分布情况考察结果 | 第51-56页 |
| ·系统适应性测定 | 第51-53页 |
| ·线性关系考察 | 第53-54页 |
| ·精密度考察 | 第54-55页 |
| ·组织中药物浓度测定 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56页 |
| ·葫芦素B抑制裸鼠皮下移植瘤的生长 | 第56页 |
| ·药物在裸鼠体内各组织中的分布情况 | 第56页 |
| ·结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 综述 | 第59-65页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
