| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| ·黄色花研究概述 | 第11-14页 |
| ·黄色花花色素组成及育种进展 | 第11-12页 |
| ·类黄酮生物合成途径调控黄色花研究进展 | 第12-13页 |
| ·橙酮合成途径 | 第13-14页 |
| ·苹果属植物相关研究概述 | 第14-17页 |
| ·苹果属植物类黄酮调控研究进展 | 第14-15页 |
| ·苹果属植物组织培养及转基因研究进展 | 第15-17页 |
| ·观赏海棠简介 | 第17-19页 |
| 第二章 论文研究内容 | 第19-20页 |
| ·‘雪球’海棠组织培养快繁体系及叶片再生体系的构建与优化 | 第19页 |
| ·Am4’CGT 和 AmAS1 基因克隆 | 第19页 |
| ·Am4’CGT 和 AmAS1 双价表达载体的构建 | 第19页 |
| ·重组克隆载体的构建 | 第19页 |
| ·植物双价表达载体的构建 | 第19页 |
| ·目的基因在‘雪球’海棠花瓣里的瞬时表达 | 第19-20页 |
| 第三章 ‘雪球’海棠组织培养快繁体系及叶片再生体系的构建与优化 | 第20-27页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·植物材料 | 第20页 |
| ·主要试剂及配置方法 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-22页 |
| ·外植体消毒 | 第20页 |
| ·初代培养获取无菌苗 | 第20-21页 |
| ·扩繁培养基的优化 | 第21页 |
| ·叶片愈伤组织诱导及不定芽分化 | 第21页 |
| ·生根与移栽 | 第21-22页 |
| ·数据分析方法 | 第22页 |
| ·结果与分析 | 第22-24页 |
| ·‘雪球’海棠组培苗无菌体系的建立 | 第22页 |
| ·不同质量浓度 6-BA 及 IBA 组合对‘雪球’海棠组培苗增殖的影响 | 第22-23页 |
| ·不同质量浓度 TDZ 及 NAA 组合对‘雪球’海棠离体叶盘不定芽再生的影响 | 第23-24页 |
| ·不同 IBA 质量浓度对西府海棠组培苗生根的影响 | 第24页 |
| ·讨论 | 第24-27页 |
| 第四章 金鱼草 Am4’CGT 和 AmAS1 基因克隆 | 第27-38页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·植物材料 | 第27页 |
| ·菌株、质粒和试剂 | 第27页 |
| ·试剂配制 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-31页 |
| ·植物总 RNA 的提取 | 第27-28页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第28-29页 |
| ·引物设计 | 第29页 |
| ·PCR 扩增 | 第29-30页 |
| ·PCR 产物平末端加 A 反应、纯化及 T 载体连接反应 | 第30-31页 |
| ·热击法转化大肠杆菌 Top 感受态细胞 | 第31页 |
| ·结果与分析 | 第31-36页 |
| ·金鱼草花总 RNA 提取及反转录合成 cDNA 第一链 | 第31-32页 |
| ·Am4’CGT 基因的克隆及鉴定 | 第32-34页 |
| ·AmAS1 基因的克隆及鉴定 | 第34-36页 |
| ·讨论 | 第36-38页 |
| 第五章 植物双价表达载体的构建及在‘雪球’海棠花瓣里的瞬时表达 | 第38-50页 |
| ·材料 | 第38-39页 |
| ·质粒和菌株 | 第38页 |
| ·酶及试剂 | 第38页 |
| ·PCR 引物 | 第38-39页 |
| ·培养基及其他试剂配方 | 第39页 |
| ·实验方法 | 第39-44页 |
| ·重组载体 GUS-pCambia1302 的构建策略 | 第39-41页 |
| ·植物双价表达载体 CGT-AS-pCambia1302 的构建策略 | 第41-42页 |
| ·农杆菌 EHA105 感受态细胞的制备 | 第42-43页 |
| ·重组质粒电击法转化农杆菌 EHA105 感受态细胞 | 第43页 |
| ·目的基因在‘雪球’海棠花瓣中的瞬时表达 | 第43-44页 |
| ·结果与分析 | 第44-48页 |
| ·重组载体 GUS-pCambia1302 的构建与鉴定 | 第44-45页 |
| ·植物表达载体 CGT-AS-pCambia1302 的构建与鉴定 | 第45-47页 |
| ·农杆菌介导的瞬时表达结果分析 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| 第六章 小结与展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简介 | 第56页 |
