| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 1.前言 | 第10-18页 |
| ·杆状病毒 | 第10-11页 |
| ·杆状病毒简介 | 第10页 |
| ·杆状病毒基因组 | 第10页 |
| ·杆状病毒的入侵 | 第10-11页 |
| ·杆状病毒与肌动蛋白 | 第11-17页 |
| ·肌动蛋白的聚合与调控 | 第11-14页 |
| ·肌动蛋白与病原微生物的侵染与复制 | 第14页 |
| ·肌动蛋白参与杆状病毒的感染 | 第14-15页 |
| ·杆状病毒感染诱导的肌动蛋白纤维的聚合 | 第15-17页 |
| ·研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 2.实验材料和仪器 | 第18-24页 |
| ·实验材料 | 第18-22页 |
| ·试剂 | 第18-19页 |
| ·常用溶液 | 第19页 |
| ·菌株及细菌培养基 | 第19-20页 |
| ·细胞系及细胞培养基 | 第20页 |
| ·载体和引物 | 第20-22页 |
| ·病毒株 | 第22页 |
| ·主要仪器设备 | 第22-24页 |
| 3.实验方法和步骤 | 第24-37页 |
| ·载体构建 | 第24-28页 |
| ·引物设计 | 第24页 |
| ·PCR扩增目的片段 | 第24-25页 |
| ·DNA凝胶回收 | 第25页 |
| ·酶切PCR片段或质粒酶切鉴定 | 第25页 |
| ·酶连 | 第25-26页 |
| ·Ca~(2+)转感受态制备 | 第26页 |
| ·连接产物或质粒的转化 | 第26-27页 |
| ·大肠杆菌质粒DNA的提取 | 第27页 |
| ·大肠杆菌Bacmid的提取 | 第27-28页 |
| ·免疫共沉淀 | 第28-32页 |
| ·细胞培养 | 第28页 |
| ·质粒或Bacmid转染Sf9细胞 | 第28-29页 |
| ·免疫共沉淀 | 第29-31页 |
| ·Western blot检测目的蛋白 | 第31-32页 |
| ·Arp2/3-ARPC40亚基基因的克隆 | 第32-35页 |
| ·Sf9细胞系总RNA提取 | 第32-33页 |
| ·RACE克隆Arp2/3-ARPC40亚基基因 | 第33-35页 |
| ·Arp2/3-ARPC40亚基的蛋白序列分析 | 第35-36页 |
| ·免疫荧光实验 | 第36-37页 |
| 4.实验结果 | 第37-47页 |
| ·C42与P78/83之间相互作用位点的识别 | 第37-39页 |
| ·融合V5标签的C42截短型突变体的构建 | 第37-38页 |
| ·Co-IP实验识别C42与P78/83之间相互作用位点 | 第38-39页 |
| ·C42可以通过与P78/83相互作用稳定P78/83 | 第39-40页 |
| ·P78/83各截短型突变体在细胞中的稳定性 | 第40-41页 |
| ·P78/83各个截短型突变体的构建 | 第40-41页 |
| ·P78/83各个截短型突变体的稳定性检测 | 第41页 |
| ·Sf9细胞系中Arp2/3复合体中ARPC40亚基的克隆及功能分析 | 第41-47页 |
| ·RACE扩增Sf9细胞系中Arp2/3复合体中ARPC40亚基 | 第41-42页 |
| ·ARPC40的生物信息学分析 | 第42-44页 |
| ·ARPC40的亚细胞分布 | 第44-45页 |
| ·P78/83-ARPC40的相互作用 | 第45-47页 |
| 5.讨论 | 第47-50页 |
| ·C42蛋白具有稳定P78/83蛋白的作用 | 第47页 |
| ·Arp2/3-ARPC40亚基的克隆及其功能分析 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 文章中的缩略词 | 第55-56页 |
| 研究成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
