| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 文献综述 | 第7-18页 |
| ·研究目的和意义 | 第7页 |
| ·鱼类免疫球蛋白的研究进展 | 第7-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-25页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·斑点叉尾鮰血清免疫球蛋白的提取、纯化 | 第18-21页 |
| ·免疫斑点叉尾鮰 | 第18-19页 |
| ·血清制备 | 第19页 |
| ·饱和硫酸铵(SAS)分步盐析 | 第19页 |
| ·Sepharose-4B凝胶柱层析 | 第19页 |
| ·DEAE-52阴离子交换柱层析 | 第19-20页 |
| ·平板凝集试验 | 第20页 |
| ·酶联免疫吸附检测(ELISA) | 第20页 |
| ·蛋白含量测定 | 第20页 |
| ·SDS-PAGE纯度鉴定 | 第20-21页 |
| ·鼠单克隆腹水抗体的制备与酶标记 | 第21-23页 |
| ·杂交瘤细胞来源、制备过程 | 第21-22页 |
| ·小鼠单克隆腹水抗体的制备与纯化 | 第22页 |
| ·单克隆抗体的碱性磷酸酶标记物制备 | 第22页 |
| ·单克隆抗体最佳工作浓度、特异性的测定 | 第22-23页 |
| ·兔抗鮰血清Ig多克隆抗体的制备与酶标记 | 第23-24页 |
| ·多克隆抗体的制备与纯化 | 第23页 |
| ·多克隆抗体碱性磷酸酶标记物的制备 | 第23页 |
| ·多克隆抗体最佳工作浓度、特异性的测定 | 第23-24页 |
| ·斑点叉尾鮰血清Ig的结构分析 | 第24-25页 |
| ·SDS-PAGE(denatured and reduced) | 第24页 |
| ·梯度SDS-PAGE(denatured but non-reduced) | 第24页 |
| ·梯度PAGE(non-denatured and non-reduced) | 第24页 |
| ·Western blot | 第24-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-37页 |
| ·斑点叉尾鮰血清免疫球蛋白的提取纯化与纯度鉴定 | 第25-32页 |
| ·SAS沉淀 | 第25-26页 |
| ·Sepharose-4B及ELISA | 第26-28页 |
| ·DEAE-52及ELISA | 第28-30页 |
| ·SDS-PAGE纯度鉴定 | 第30-32页 |
| ·小鼠腹水单克隆抗体和兔多克隆抗体最佳工作浓度、特异性测定 | 第32-33页 |
| ·最佳工作浓度的确定 | 第32页 |
| ·特异性测定 | 第32-33页 |
| ·斑点叉尾鮰血清免疫球蛋白的结构分析 | 第33-37页 |
| ·变性还原SDS-PAGE与Western blot | 第33-35页 |
| ·变性非还原SDS-PAGE与Western blot | 第35-36页 |
| ·非变性非还原PAGE与Western blot | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-41页 |
| 5 参考文献 | 第41-47页 |
| 6 致谢 | 第47页 |
