中文摘要 | 第1-11页 |
英文摘要 | 第11-16页 |
缩略语 | 第16-17页 |
前言 | 第17-20页 |
1 本研究论文的立题依据和意义 | 第17-19页 |
2 本研究基本上需要达到三个目的 | 第19页 |
3 主要研究内容 | 第19-20页 |
第一章 Caco-2 细胞单层膜模型的建立及评价 | 第20-32页 |
一、实验材料 | 第21页 |
1 仪器 | 第21页 |
2 试药 | 第21页 |
3 细胞来源 | 第21页 |
二、实验方法 | 第21-25页 |
1 溶液的配制 | 第21页 |
2 Caco-2 细胞培养 | 第21-23页 |
3 Caco-2 细胞单层膜的制备 | 第23页 |
4 Caco-2 细胞单层膜模型的评价 | 第23-24页 |
5 统计学处理 | 第24-25页 |
三、实验结果 | 第25-30页 |
1 细胞形态学观察 | 第25页 |
2 细胞生长曲线绘制 | 第25-26页 |
3 Caco-2 细胞单层膜的模型评价 | 第26-30页 |
四、讨论 | 第30-31页 |
五、本章小结 | 第31-32页 |
第二章 Caco-2 细胞模型研究药用辅料抑制P-糖蛋白药泵的作用 | 第32-57页 |
一、实验材料 | 第33页 |
1 仪器 | 第33页 |
2 试药 | 第33页 |
3 细胞来源 | 第33页 |
二、实验方法 | 第33-38页 |
1 溶液的配制 | 第33-34页 |
2 Caco-2 细胞活力检测 | 第34-35页 |
3 MTT 法细胞毒性检测 | 第35页 |
4 Caco-2 细胞单层膜跨膜转运液中塞利洛尔浓度测定 | 第35-36页 |
5 药用辅料对塞利洛尔跨膜转运影响实验 | 第36-37页 |
6 药用辅料对Caco-2 细胞单层膜TEER 值的影响 | 第37页 |
7 药用辅料对Caco-2 细胞单层膜结构的影响 | 第37-38页 |
三、实验结果 | 第38-53页 |
1 Caco-2 细胞活力检测 | 第38-39页 |
2 MTT 法细胞毒性检测 | 第39-40页 |
3 HPLC 测定塞利洛尔方法学研究 | 第40-43页 |
4 药用辅料对塞利洛尔跨膜转运影响 | 第43-53页 |
四、讨论 | 第53-55页 |
五、本章小结 | 第55-57页 |
第三章 离体外翻小肠法研究药用辅料抑制P-糖蛋白药泵作用 | 第57-71页 |
一、实验材料 | 第58页 |
1 仪器 | 第58页 |
2 试药 | 第58页 |
3 实验动物 | 第58页 |
二、实验方法 | 第58-61页 |
1 溶液的配制 | 第58-59页 |
2 HPLC 测定塞利洛尔色谱条件 | 第59页 |
3 样品处理方法 | 第59页 |
4 离体外翻小肠法考察药用辅料对塞利洛尔跨膜转运影响 | 第59-61页 |
三、实验结果 | 第61-67页 |
1 外翻小肠液中塞利洛尔浓度测定 | 第61-62页 |
2 离体外翻小肠模型研究药用辅料抑制P-gp 药泵的作用 | 第62-67页 |
四、讨论 | 第67-69页 |
五、本章小结 | 第69-71页 |
第四章 在体小肠灌流模型研究药用辅料抑制P-糖蛋白药泵作用 | 第71-84页 |
一、实验材料 | 第72页 |
1 仪器 | 第72页 |
2 试药 | 第72页 |
3 实验动物 | 第72页 |
二、实验方法 | 第72-75页 |
1 溶液配制 | 第72-73页 |
2 HPLC 测定塞利洛尔色谱条件 | 第73页 |
3 样品处理方法 | 第73页 |
4 在体小肠灌流模型研究药用辅料抑制P-gp 药泵的作用 | 第73-75页 |
三、实验结果 | 第75-81页 |
1 HPLC 测定在体灌流液中塞利洛尔浓度 | 第75-76页 |
2 在体灌流液中酚红分析方法的建立 | 第76-77页 |
3 在体小肠灌流模型研究药用辅料抑制P-gp 药泵的作用 | 第77-81页 |
四、讨论 | 第81-83页 |
五、本章小结 | 第83-84页 |
第五章 原位小肠吸收法研究药用辅料抑制P-糖蛋白药泵作用 | 第84-96页 |
一、实验材料 | 第85页 |
1 仪器 | 第85页 |
2 试药 | 第85页 |
3 实验动物 | 第85页 |
二、实验方法 | 第85-87页 |
1 溶液配制 | 第85-86页 |
2 HPLC 测定塞利洛尔色谱条件 | 第86页 |
3 样品处理方法 | 第86页 |
4 原位小肠吸收模型研究药用辅料抑制P-gp 药泵的作用 | 第86-87页 |
三、实验结果 | 第87-93页 |
1 HPLC 测定血浆中塞利洛尔浓度方法学研究 | 第87-88页 |
2 塞利洛尔大鼠体内药代动力学研究 | 第88-93页 |
四、讨论 | 第93-95页 |
五、本章小结 | 第95-96页 |
第六章 辅料逆转剂对大鼠小肠P-gp 表达的影响 | 第96-106页 |
一、实验材料 | 第97页 |
1 仪器 | 第97页 |
2 试药 | 第97页 |
3 实验动物 | 第97页 |
二、实验方法 | 第97-101页 |
1 给药方案设计 | 第97-99页 |
2 小肠膜蛋白的分离 | 第99页 |
3 BCA 法测定蛋白含量 | 第99-100页 |
4 蛋白电泳与免疫印迹 | 第100-101页 |
三、实验结果 | 第101-104页 |
1 小肠粘膜蛋白分离 | 第101页 |
2 BCA 法测定蛋白含量 | 第101-102页 |
3 蛋白电泳 | 第102-104页 |
四、讨论 | 第104-105页 |
五、本章小结 | 第105-106页 |
第七章 辅料逆转剂对更昔洛韦肠道吸收的影响 | 第106-119页 |
一、实验材料 | 第107页 |
1 仪器 | 第107页 |
2 药品及试剂 | 第107页 |
3 细胞来源 | 第107页 |
4 实验动物 | 第107页 |
二、实验方法 | 第107-109页 |
1 溶液配制 | 第107-108页 |
2 更昔洛韦分析方法建立 | 第108页 |
3 更昔洛韦样品处理方法 | 第108-109页 |
4 辅料逆转剂对更昔洛韦小肠吸收的影响 | 第109页 |
三、实验结果 | 第109-116页 |
1 更昔洛韦HPLC 测定方法学研究 | 第109-111页 |
2 辅料逆转剂对更昔洛韦吸收特性影响 | 第111-116页 |
四、讨论 | 第116-118页 |
五、本章小结 | 第118-119页 |
结论与展望 | 第119-122页 |
1 全文结论 | 第119-120页 |
2 创新性 | 第120页 |
3 展望 | 第120-122页 |
参考文献 | 第122-128页 |
综述 | 第128-147页 |
参考文献 | 第140-147页 |
致谢 | 第147-148页 |
附件:博士在读期间发表论文 | 第148页 |