| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 上篇 文献综述 | 第12-37页 |
| 第一章 疫病菌群体遗传多样性 | 第13-23页 |
| 1 遗传多样性的研究 | 第13-20页 |
| ·遗传多样性的概述 | 第13-14页 |
| ·遗传多样性概念 | 第13页 |
| ·遗传多样性的本质 | 第13页 |
| ·遗传多样性的层次 | 第13页 |
| ·遗传多样性的研究意义 | 第13-14页 |
| ·遗传多样性产生的基础 | 第14-15页 |
| ·遗传突变 | 第14-15页 |
| ·重组 | 第15页 |
| ·种群遗传结构 | 第15-16页 |
| ·种群和基因库 | 第15页 |
| ·基因和基因型频率 | 第15-16页 |
| ·哈代—温伯格(Hardy-Weinberg)平衡 | 第16页 |
| ·遗传多样性研究的分子生物学技术 | 第16-20页 |
| ·同工酶电泳(isozyme electrophoresis) | 第17页 |
| ·限制性片段长度多态性(restriction fragment length polymorphism) | 第17页 |
| ·随机扩增多态性DNA(random amplified polymorphism DNA) | 第17-18页 |
| ·扩增片段长度多态性(amplified fragment length polymorphism) | 第18-19页 |
| ·简单重复序列多态性(simple sequence repeat) | 第19页 |
| ·简单重复序列间多态性(inter simple sequence repeat) | 第19-20页 |
| 2 栗疫病菌遗传多样性的研究进展 | 第20-23页 |
| ·营养体亲和性 | 第21页 |
| ·同工酶、全蛋白电泳 | 第21-22页 |
| ·DNA分子技术 | 第22-23页 |
| 第二章 疫病菌营养体不亲和性引起的细胞程序性死亡 | 第23-31页 |
| 1 栗疫病菌营养体不亲和性的概述 | 第23-24页 |
| 2 细胞程序性死亡的概述 | 第24-31页 |
| ·细胞程序性死亡的概念及起源 | 第24页 |
| ·细胞程序性死亡调控机理 | 第24-25页 |
| ·细胞在PCD过程中的形态和生化特征 | 第25-26页 |
| ·真菌PCD的检测方法 | 第26-31页 |
| ·形态学检测 | 第26-28页 |
| ·光学显微镜观察 | 第26-27页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第27页 |
| ·电子显微镜观察 | 第27-28页 |
| ·生物化学检测 | 第28页 |
| ·分子生物学检测 | 第28页 |
| ·流式细胞仪定量分析 | 第28-29页 |
| ·其它检测方法 | 第29-30页 |
| ·磷脂酰丝氨酸外翻分析联合联合PI法(Annexin Ⅴ-PI) | 第29页 |
| ·蛋白酶活性检测 | 第29-30页 |
| ·其他 | 第30页 |
| ·综合运用各种检测方法 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-37页 |
| 下篇 研究内容 | 第37-74页 |
| 第一章 栗疫病菌群体遗传多样性 | 第39-58页 |
| 1 材料与方法 | 第40-49页 |
| ·实验材料 | 第40-46页 |
| ·供试菌株 | 第40-45页 |
| ·培养基 | 第45-46页 |
| ·马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA) | 第45-46页 |
| ·马铃薯葡萄糖培养液(PDB) | 第46页 |
| ·研究方法 | 第46-47页 |
| ·菌丝收集 | 第46页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第46-47页 |
| ·试剂配制 | 第46页 |
| ·DNA提取方法 | 第46-47页 |
| ·DNA质量与浓度检测 | 第47页 |
| ·ISSR分析 | 第47页 |
| ·引物设计 | 第47页 |
| ·ISSR-PCR反应体系 | 第47页 |
| ·ISSR-PCR反应程序 | 第47页 |
| ·数据统计与分析 | 第47-49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-53页 |
| ·引物筛选 | 第49页 |
| ·扩增结果 | 第49-50页 |
| ·群体内遗传多样性分析 | 第50-51页 |
| ·群体间遗传分化 | 第51页 |
| ·群体间遗传距离 | 第51-52页 |
| ·群体间遗传多样性 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-56页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
| 第二章 疫病菌营养体不亲和性引起的程序性细胞死亡 | 第58-74页 |
| 1 材料与方法 | 第61-63页 |
| ·实验材料 | 第61-62页 |
| ·供试菌株 | 第61页 |
| ·培养基 | 第61页 |
| ·马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA) | 第61页 |
| ·半合成培养液 | 第61页 |
| ·EP完全培养液 | 第61页 |
| ·水琼脂培养基(1%) | 第61页 |
| ·试剂配制 | 第61-62页 |
| ·磷酸钠缓冲液(Gomor:缓冲液)(pH 6.8) | 第61-62页 |
| ·戊二醛固定液(2.5%) | 第62页 |
| ·试验仪器 | 第62页 |
| ·研究方法 | 第62-63页 |
| ·检测营养体亲和性 | 第62页 |
| ·菌株的配对培养和观测 | 第62页 |
| ·扫描电镜菌株的培养 | 第62页 |
| ·玻片的制备 | 第62-63页 |
| ·显微镜玻片的制备 | 第62页 |
| ·扫描电镜玻片的制备 | 第62-63页 |
| ·显微镜观察菌丝融合过程 | 第63页 |
| ·扫描电镜观察菌丝融合过程 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-70页 |
| ·检测营养体亲和性 | 第63-64页 |
| ·菌丝融合过程的显微观察 | 第64-69页 |
| ·营养体亲和菌株的菌丝融合过程 | 第64-66页 |
| ·营养体不亲和菌株的菌丝融合过程 | 第66-69页 |
| ·扫描电镜观察菌丝融合过程 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 攻读学位期间发表的论文目录 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
