首页--医药、卫生论文--肿瘤学论文--一般性问题论文--肿瘤治疗学论文

GPX和SOD协同作用模拟和新含硒肽的抗肿瘤作用

提要第1-15页
第一章 本论文立论依据第15-23页
第二章 含硒肽模拟谷胱甘肽过氧化物酶第23-47页
 第一节 序言第23-24页
 第二节 硒代半胱氨酸及其衍生物的合成第24-30页
  一、实验材料第24-25页
   1、药品和试剂第24-25页
   2、实验仪器第25页
  二、实验方法第25-28页
   1、β-氯-丙氨酸的合成第25-26页
   2、硒代胱氨酸(Selenocystine)的合成第26-27页
   3、H-Sec(PMB)-OH 的合成第27页
   4、Fmoc-Sec(PMB)-OH 的合成第27-28页
   5、Fmoc-Sec(PMB)-OH 的质谱分析第28页
  三、结果和讨论第28-30页
   1、Fmoc-Sec(PMB)-OH 的合成第28-29页
   2、Fmoc-Sec(PMB)-OH 的表征第29-30页
 第三节 具有 GPX 活性的硒肽的合成及性质研究第30-42页
  一、实验材料第30-32页
   1、药品和试剂第30-31页
   2、肽合成主要试剂的配制第31-32页
   3、实验仪器第32页
  二、实验方法第32-35页
   1、含硒肽合成第32-33页
   2、合成硒肽的表征第33-34页
   3、GPX活力测定第34页
   4、稳态动力学研究第34-35页
   5、最适温度和最适pH第35页
  三、结果与讨论第35-41页
   1、硒肽的合成与纯化第35-36页
   2、硒肽的质谱分析第36-37页
   3、含硒多肽的硒含量检测第37页
   4、Se8P 的GPX 活力第37页
   5、Se8P的稳态动力学第37-39页
   6、Se8P 的最适pH 和最适温度第39-41页
  四、讨论第41-42页
 本章小节第42-43页
 参考文献第43-47页
第三章 含硒肽诱导人黑素瘤 A375 细胞凋亡第47-73页
 第一节 序言第47-48页
 第二节 含硒多肽诱导黑素瘤细胞凋亡第48-57页
  一、实验材料第48-49页
   1、主要试剂第48页
   2、主要仪器第48页
   3、试剂配制第48-49页
  二、实验方法第49-53页
   1、细胞培养第49-50页
   2、细胞形态学观察第50页
   3、MTT 法测细胞存活率第50-51页
   4、细胞胞浆酶—乳酸脱氢酶(LDH)含量测定第51-52页
   5、二苯胺(DPA)法分析细胞内的DNA片段化第52页
   6、统计学分析第52-53页
  三、结果与讨论第53-56页
   1、细胞形态学分析第53页
   2、Se8P对人黑素瘤A375细胞的生长抑制第53-54页
   3、Se8P对A375细胞的毒性作用第54-55页
   4、A375细胞DNA片段化分析第55-56页
  四、讨论第56-57页
 第三节 含硒多肽诱导黑素瘤细胞凋亡的机制第57-69页
  一、实验材料第57-58页
   1、主要试剂第57页
   2、主要仪器第57页
   3、试剂配制第57-58页
  二、实验方法第58-62页
   1、细胞培养第58-59页
   2、A375 细胞内活性氧的荧光检测第59页
   3、A375细胞内活性氧的流式细胞仪检测第59页
   4、A375 细胞内线粒体跨膜电位的荧光检测第59-60页
   5、A375 细胞内线粒体跨膜电位流式细胞仪检测第60页
   6、细胞胞浆谷胱甘肽过氧化物酶活力检测第60-61页
   7、细胞内谷胱甘肽含量的检测第61页
   8、GSH,DTT和SOD对Se8P诱导A375细胞凋亡的影响第61页
   9、统计学分析第61-62页
  三、结果和讨论第62-67页
   1、Se8P 诱导细胞内活性氧(ROS)的产生第62页
   2、Se8P 诱导的细胞内活性氧(ROS)的流式细胞仪检测第62-63页
   3、Se8P诱导A375细胞内线粒体跨膜电位(△Ψm)变化的荧光检测第63-64页
   4、Se8P 诱导的细胞内线粒体跨膜电位的流式细胞仪检测第64-65页
   5、Se8P 引起A375 细胞内GPX 和GSH 的变化第65-66页
   6、GSH,DTT 和SOD 对Se8P 诱导A375 细胞凋亡的影响第66-67页
  四、讨论第67-69页
 本章小节第69页
 参考文献第69-73页
第四章 具有SOD和GPX活力的双功能含硒多肽第73-92页
 第一节 序言第73-74页
 第二节 双功能酶的多肽前体的合成和表征第74-80页
  一、实验材料第74-76页
   1、药品和试剂第74-75页
   2、肽合成主要试剂的配制第75-76页
   3、实验仪器第76页
  二、实验方法第76-78页
   1、多肽合成第76-77页
   2、合成多肽的表征第77-78页
  三、结果与讨论第78-80页
   1、双功能酶多肽前体的构建第78页
   2、多肽的合成与纯化第78页
   3、多肽的 HPLC 分析第78-79页
   4、多肽的质谱分析第79-80页
  四、结论第80页
 第三节 双功能模拟物的制备和性质研究第80-88页
  一、实验材料第80-81页
   1、药品和试剂第80页
   2、实验仪器第80-81页
  二、实验方法第81-83页
   1、NaHSe的制备第81页
   2、含硒多肽的制备第81页
   3、含硒多肽与铜螯合第81页
   4、硒含量的测定第81-82页
   5、铜含量的测定第82页
   6、双功能多肽的 GPX 活力测定第82页
   7、双功能多肽的 SOD 活力测定第82-83页
   8、双功能多肽的GPX活力的稳态动力学研究第83页
  三、结果和讨论第83-87页
   1、双功能多肽的合成第83-84页
   2、Se-Cu-32P的表征第84页
   3、双功能多肽的GPX 活力和SOD 活力第84-85页
   4、双功能多肽 GPX 活力的稳态动力学第85-87页
  四、讨论第87-88页
 本章小节第88-89页
 参考文献第89-92页
第五章 含硒多肽的抗氧化生物学效应研究第92-109页
 第一节 序言第92-93页
 第二节 GPX 模拟物的生物学效应第93-98页
  一、实验材料第93-94页
   1、主要试剂第93页
   2、主要仪器第93页
   3、试剂配制第93-94页
  二、实验方法第94-95页
   1、细胞培养第94页
   2、H_2O_2对vero细胞的损伤第94页
   3、MTT 法测细胞存活率第94-95页
   4、LDH 含量测定第95页
   5、统计学分析第95页
  三、结果与讨论第95-98页
   1、H_2O_2对vero细胞存活率的影响第95-96页
   2、GPX模拟物对H_2O_2 损伤的vero细胞的保护作用第96-97页
   3、GPX模拟物对H_2O_2泄漏vero细胞LDH的影响第97-98页
 第三节 双功能多肽的生物学效应第98-104页
  一、实验材料第98-99页
   1、主要试剂第98-99页
   2、主要仪器第99页
   3、试剂配制第99页
  二、实验方法第99-101页
   1、细胞培养第99-100页
   2、H_2O_2 对vero细胞的损伤第100页
   3、XOD/Xanthine/Fe~(2+)对vero细胞的损伤第100页
   4、MTT 法测细胞存活率第100-101页
   5、统计学分析第101页
  三、结果和讨论第101-103页
   1、双功能酶对H_2O_2 损伤的培养vero 细胞的保护作用第101-102页
   2、双功能酶对XOD/Xanthine/Fe~(2+)损伤的培养vero细胞的保护作用第102-103页
  四、讨论第103-104页
 本章小节第104-105页
 参考文献第105-109页
作者简历第109页
博士期间已发表和待发表的文章第109-111页
致谢第111-112页
中文摘要第112-116页
ABSTRACT第116-119页

论文共119页,点击 下载论文
上一篇:三类数学物理模型的分析与应用
下一篇:城市公共空间形态研究