海参肽的酶法制备工艺及抗疲劳活性研究
| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 1 绪论 | 第9-27页 |
| ·引言 | 第9-10页 |
| ·生物活性肽的理化特性 | 第10-11页 |
| ·生物活性肽的生理功能 | 第11-14页 |
| ·生物活性肽的食品感官特性 | 第14-15页 |
| ·生物活性肽的吸收机制 | 第15-16页 |
| ·生物活性肽的制备方法 | 第16-20页 |
| ·直接分离提取法制备生物活性肽 | 第17-18页 |
| ·合成法制备生物活性肽 | 第18-19页 |
| ·酶法制备生物活性肽 | 第19-20页 |
| ·酶法制备生物活性肽的研究进展 | 第20-22页 |
| ·国外酶法制备生物活性肽的研究进展 | 第20-21页 |
| ·国内酶法制备生物活性肽的研究进展 | 第21-22页 |
| ·生物活性肽的膜分离技术 | 第22-23页 |
| ·本课题的立项依据、研究意义和研究内容 | 第23-27页 |
| ·立项依据和研究意义 | 第23-25页 |
| ·主要研究内容 | 第25页 |
| ·研究路线 | 第25-27页 |
| 2 海参肽制备工艺的优化及多糖的分离 | 第27-38页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·材料与方法 | 第27-30页 |
| ·实验材料 | 第27页 |
| ·实验试剂 | 第27页 |
| ·实验仪器及设备 | 第27-28页 |
| ·实验分析方法 | 第28-30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-36页 |
| ·海参品种的鉴定结果 | 第30页 |
| ·刺参中基本物质的含量测定结果 | 第30页 |
| ·最佳用酶的确定 | 第30-31页 |
| ·最佳酶解条件的确定 | 第31-36页 |
| ·海参肽的制备工艺 | 第36-37页 |
| ·酶解 | 第36页 |
| ·分离 | 第36-37页 |
| ·干燥 | 第37页 |
| ·海参多糖的分离纯化 | 第37页 |
| ·粗多糖的溶解 | 第37页 |
| ·乙酸钾法除蛋白 | 第37页 |
| ·多糖的脱色 | 第37页 |
| ·洗涤干燥 | 第37页 |
| ·本章小结 | 第37-38页 |
| 3 海参肽的纯化与分子量分布研究 | 第38-46页 |
| ·引言 | 第38页 |
| ·材料与方法 | 第38-40页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验试剂 | 第38-39页 |
| ·实验仪器及设备 | 第39页 |
| ·海参肽的超滤法纯化 | 第39页 |
| ·高效液相色谱法测定分子量分布 | 第39-40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-45页 |
| ·分子量标准曲线的绘制 | 第40-43页 |
| ·海参肽分子量分布图谱的绘制 | 第43-45页 |
| ·本章小结 | 第45-46页 |
| 4 海参肽抗疲劳活性的研究 | 第46-55页 |
| ·引言 | 第46-48页 |
| ·疲劳的定义及产生机理 | 第46页 |
| ·抗疲劳的意义 | 第46-47页 |
| ·抗疲劳活性的评价方法 | 第47-48页 |
| ·材料与方法 | 第48-50页 |
| ·实验材料 | 第48页 |
| ·实验试剂 | 第48页 |
| ·实验仪器及设备 | 第48-49页 |
| ·动物分组和灌胃剂量的设计 | 第49页 |
| ·小鼠体重的测定 | 第49页 |
| ·负重游泳实验 | 第49页 |
| ·转棒实验 | 第49页 |
| ·血尿素氮含量的测定 | 第49页 |
| ·肝糖原含量的测定 | 第49-50页 |
| ·数据统计与分析 | 第50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-54页 |
| ·海参肽对小鼠状态的影响 | 第50页 |
| ·海参肽对小鼠体重的影响 | 第50页 |
| ·海参肽对小鼠游泳和转棒时间的影响 | 第50-52页 |
| ·海参肽对运动后小鼠血尿素氮和肝糖原含量的影响 | 第52-54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 5 总结与展望 | 第55-57页 |
| ·全文总结 | 第55页 |
| ·本论文的创新之处 | 第55-56页 |
| ·展望 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 附录1 攻读学位期间发表的论文目录 | 第62页 |
