| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-42页 |
| 1．1 国外空间生物学的研究概况 | 第19-21页 |
| 1．2 国内空间生物学的研究概况 | 第21-22页 |
| 1．3 返回式卫星的空间环境 | 第22-24页 |
| 1．4 航天诱变育种主要成就 | 第24-28页 |
| 1．4．1 粮食作物和经济作物 | 第25-26页 |
| 1．4．1．1 水稻 | 第25页 |
| 1．4．1．2 麦类 | 第25页 |
| 1．4．1．3 玉米 | 第25-26页 |
| 1．4．1．4 棉花 | 第26页 |
| 1．4．1．5 豆类 | 第26页 |
| 1．4．1．6 高粱 | 第26页 |
| 1．4．1．7 烟草 | 第26页 |
| 1．4．2 蔬菜 | 第26-27页 |
| 1．4．2．1 黄瓜 | 第26-27页 |
| 1．4．2．2 甜椒 | 第27页 |
| 1．4．2．3 番茄 | 第27页 |
| 1．4．3 花卉 | 第27页 |
| 1．4．4 微生物 | 第27-28页 |
| 1．4．5 无性系植物 | 第28页 |
| 1．4．6 己育成并通过审定的品种 | 第28页 |
| 1．5 航天诱变育种性状变异的特点 | 第28-31页 |
| 1．5．1 突变具有广谱性 | 第28-29页 |
| 1．5．2 易出现特殊突变体，能够创造自然界所没有的新性状和新基因 | 第29-30页 |
| 1．5．3 诱变频率高 | 第30页 |
| 1．5．4 育种周期短，稳定快 | 第30-31页 |
| 1．5．5 不存在转基因的潜在安全隐患 | 第31页 |
| 1．6 航天搭载的生物学效应研究 | 第31-33页 |
| 1．6．1 植物生长发育效应 | 第31页 |
| 1．6．2 植物形态与生理生化效应 | 第31-32页 |
| 1．6．3 细胞学和分子生物学效应 | 第32-33页 |
| 1．7 航天诱变育种的主要研究内容 | 第33-38页 |
| 1．7．1 诱变材料的保存 | 第34页 |
| 1．7．2 形态学鉴定 | 第34页 |
| 1．7．3 细胞学观察 | 第34页 |
| 1．7．4 生理生化分析 | 第34-35页 |
| 1．7．5 分子标记分析 | 第35-36页 |
| 1．7．6 地面模拟空间环境试验 | 第36-38页 |
| 1．7．6．1 粒子生物学效应模拟 | 第36-37页 |
| 1．7．6．2 弱地磁生物学效应模拟试验 | 第37页 |
| 1．7．6．3 微重力效应模拟试验 | 第37-38页 |
| 1．8 航天诱变育种的机理 | 第38-40页 |
| 1．8．1 微重力说 | 第38-39页 |
| 1．8．2 空间辐射说 | 第39-40页 |
| 1．8．3 转座子说 | 第40页 |
| 1．9 问题与展望 | 第40-41页 |
| 1．10 本研究的主要研究内容 | 第41-42页 |
| 第二章 航天诱变番茄无限生长习性突变体的选育 | 第42-51页 |
| 2．1 材料与方法 | 第42-44页 |
| 2．1．1 试验材料 | 第42页 |
| 2．1．2 试验方法 | 第42-44页 |
| 2．1．2．1 航天搭载方法 | 第42页 |
| 2．1．2．2 田间试验 | 第42-43页 |
| 2．1．2．3 田间调查 | 第43页 |
| 2．1．2．4 选育程序 | 第43页 |
| 2．1．2．5 细胞学观察方法 | 第43页 |
| 2．1．2．6 花粉粒的观察和花粉活力的测定 | 第43页 |
| 2．1．2．7 杂交自交 | 第43-44页 |
| 2．1．2．8 数据分析 | 第44页 |
| 2．2 结果与分析 | 第44-49页 |
| 2．2．1 番茄无限生长突变体的选育 | 第44-45页 |
| 2．2．2 番茄无限生长突变体的生物学特性 | 第45-46页 |
| 2．2．3 航天诱变番茄无限生长突变体和CK的株高变化动态比较 | 第46-47页 |
| 2．2．4 番茄突变株SP_1-1和突变体MS1根尖细胞、花粉母细胞和花粉粒的观察 | 第47-48页 |
| 2．2．5 突变体 MS1无限生长习性的遗传分析 | 第48-49页 |
| 2．3 讨论 | 第49-51页 |
| 第三章 航天诱变番茄无限生长突变体 SOD和 POD同工酶分析 | 第51-58页 |
| 3．1 材料与方法 | 第51-54页 |
| 3．1．1 试验材料 | 第51-52页 |
| 3．1．2 试验方法 | 第52-54页 |
| 3．1．2．1 取样 | 第52页 |
| 3．1．2．2 酶液提取 | 第52页 |
| 3．1．2．3 聚丙烯酰胺凝胶制备 | 第52页 |
| 3．1．2．4 染色 | 第52页 |
| 3．1．2．5 凝胶保存方法 | 第52页 |
| 3．1．2．6 酶活性测定 | 第52-53页 |
| 3．1．2．7 数据分析 | 第53-54页 |
| 3．2 结果与分析 | 第54-56页 |
| 3．2．1 SOD同工酶酶谱分析 | 第54页 |
| 3．2．2 POD同工酶酶谱分析 | 第54-55页 |
| 3．2．3 SOD同工酶活性分析 | 第55页 |
| 3．2．4 POD同工酶活性分析 | 第55-56页 |
| 3．3 讨论 | 第56-58页 |
| 第四章 航天诱变番茄无限生长突变体的光合特性研究 | 第58-64页 |
| 4．1 材料与方法 | 第58-59页 |
| 4．1．1 试验材料 | 第58页 |
| 4．1．2 试验方法 | 第58-59页 |
| 4．1．2．1 田间种植方法 | 第58页 |
| 4．1．2．2 植株光合参数测定 | 第58页 |
| 4．1．2．3 叶绿素的提取及含量测定 | 第58-59页 |
| 4．1．2．4 数据分析 | 第59页 |
| 4．2 结果与分析 | 第59-62页 |
| 4．2．1 净光合速率的日变化 | 第59-60页 |
| 4．2．2 气孔导度的日变化 | 第60页 |
| 4．2．3 胞间CO_2浓度的日变化 | 第60-61页 |
| 4．2．4 航天诱变番茄无限生长突变体MS1叶绿素含量的影响 | 第61-62页 |
| 4．3 讨论 | 第62-64页 |
| 第五章 航天诱变番茄无限生长突变体的分子标记研究 | 第64-81页 |
| 5．1 材料与方法 | 第64-68页 |
| 5．1．1 试验材料 | 第64页 |
| 5．1．2 试验方法 | 第64-68页 |
| 5．1．2．1 取样和 DNA提取 | 第64-65页 |
| 5．1．2．2 RAPD分析 | 第65页 |
| 5．1．2．3 多态性扩增产物的回收 | 第65-66页 |
| 5．1．2．4 特异性DNA片段的克隆 | 第66-68页 |
| 5．1．2．5 特异性 DNA片段测序 | 第68页 |
| 5．1．2．6 SCAR分析 | 第68页 |
| 5．2 结果与分析 | 第68-80页 |
| 5．2．1 DNA的提取 | 第68-69页 |
| 5．2．2 番茄RAPD反应体系和扩增程序的优化 | 第69-70页 |
| 5．2．2．1 Mg~(2+)浓度 | 第69页 |
| 5．2．2．2 Taq酶 | 第69页 |
| 5．2．2．3 dNTP浓度 | 第69页 |
| 5．2．2．4 随机引物浓度 | 第69-70页 |
| 5．2．2．5 模板DNA浓度 | 第70页 |
| 5．2．3 RAPD分析 | 第70页 |
| 5．2．4 特异性DNA片段的回收纯化 | 第70-72页 |
| 5．2．5 特异性DNA片段的克隆 | 第72页 |
| 5．2．6 特异性DNA片段克隆转化子质粒DNA的提取 | 第72页 |
| 5．2．7 特异性DNA片段序列测定结果 | 第72-79页 |
| 5．2．8 RAPD标记向SCAR标记的转换 | 第79-80页 |
| 5．3 讨论 | 第80-81页 |
| 第六章 航天诱变无限生长番茄突变体再生能力研究 | 第81-88页 |
| 6．1 材料与方法 | 第82页 |
| 6．1．1 试验材料 | 第82页 |
| 6．1．2 试验方法 | 第82页 |
| 6．1．2．1 外植体灭菌 | 第82页 |
| 6．1．2．2 培养基制备 | 第82页 |
| 6．1．2．3 接种和培养 | 第82页 |
| 6．1．2．4 数据分析 | 第82页 |
| 6．2 结果与分析 | 第82-86页 |
| 6．2．1 番茄组织培养体系的优化 | 第82-84页 |
| 6．2．1．1 基本培养基的筛选 | 第82-83页 |
| 6．2．1．2 激素的筛选 | 第83-84页 |
| 6．2．1．3 碳源的影响 | 第84页 |
| 6．2．2 IAA浓度对番茄体细胞培养效果的影响 | 第84-86页 |
| 6．2．2．1 IAA浓度对MSI和CK出愈时间的影响 | 第84-85页 |
| 6．2．2．2 IAA浓度对MSI和CK出愈率的的影响 | 第85-86页 |
| 6．3 讨论 | 第86-88页 |
| 第七章 航天诱变番茄无限生长突变体内源激素含量的研究 | 第88-96页 |
| 7．1 材料与方法 | 第88-91页 |
| 7．1．1 试验材料 | 第88-89页 |
| 7．1．2 试验方法 | 第89-91页 |
| 7．1．2．1 取材 | 第89页 |
| 7．1．2．2 试剂配制 | 第89页 |
| 7．1．2．3 激素的提取 | 第89页 |
| 7．1．2．4 样品测定 | 第89-90页 |
| 7．1．2．5 含量计算 | 第90-91页 |
| 7．1．2．6 数据分析 | 第91页 |
| 7．2 结果与分析 | 第91-93页 |
| 7．2．1 航天诱变番茄突变体的内源IAA含量测定结果 | 第91页 |
| 7．2．2 航天诱变番茄突变体的内源GA_3含量测定结果 | 第91-92页 |
| 7．2．3 航天诱变番茄突变体的内源ABA含量测定结果 | 第92页 |
| 7．2．4 航天诱变番茄突变体的内源ZR含量测定结果 | 第92-93页 |
| 7．3 讨论 | 第93-96页 |
| 小结 | 第96-99页 |
| 参考文献 | 第99-113页 |
