摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
1 前言 | 第9-20页 |
·海洋药物 | 第10-13页 |
·抗癌药物 | 第10-12页 |
·海洋抑菌、抗病毒药物 | 第12页 |
·海洋毒素类神经系统药物 | 第12-13页 |
·海草研究概述 | 第13-16页 |
·海草的种属与地理分布 | 第13-14页 |
·海草的进化 | 第14-15页 |
·海草的化学成分与生物活性 | 第15-16页 |
·水鳖科植物研究 | 第16-19页 |
·本研究的目的与意义 | 第19-20页 |
2 海菖蒲的化学成分研究 | 第20-33页 |
·实验材料、试剂及仪器设备 | 第20-21页 |
·样品及试剂 | 第20页 |
·仪器设备 | 第20-21页 |
·实验部分 | 第21-33页 |
·提取与分离 | 第21-23页 |
·化合物编号、名称及结构 | 第23-25页 |
·结构鉴定 | 第25-33页 |
3 海菖蒲多糖研究 | 第33-39页 |
·材料、试剂及仪器设备 | 第33-34页 |
·实验材料 | 第33页 |
·试剂 | 第33-34页 |
·仪器设备 | 第34页 |
·实验部分 | 第34-37页 |
·多糖的提取 | 第34页 |
·粗多糖脱蛋白 | 第34-35页 |
·总硫酸基含量测定 | 第35-36页 |
·总糖含量测定 | 第36-37页 |
·单糖组成 | 第37页 |
·结果与讨论 | 第37-38页 |
·结论 | 第38-39页 |
4 海菖蒲抑菌活性初步研究 | 第39-43页 |
·实验材料、试剂及仪器设备 | 第39-40页 |
·实验样品 | 第39页 |
·菌株 | 第39-40页 |
·试剂 | 第40页 |
·仪器设备 | 第40页 |
·实验部分 | 第40-41页 |
·样品稀释与消毒 | 第40-41页 |
·培养菌株及增菌 | 第41页 |
·最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第41页 |
·结果与讨论 | 第41-43页 |
5 体外抑制柯萨奇B_3病毒的活性研究 | 第43-54页 |
·实验材料、试剂和仪器 | 第43-45页 |
·实验材料 | 第43-44页 |
·实验细胞株 | 第44页 |
·实验病毒株 | 第44页 |
·试剂 | 第44页 |
·仪器设备 | 第44-45页 |
·实验部分 | 第45-47页 |
·Hela细胞的培养和增殖 | 第45页 |
·病毒CVB_3的增殖 | 第45页 |
·病毒毒力测定 | 第45-46页 |
·MTT比色法测定各样品对Hela细胞的毒性 | 第46页 |
·测定各样品对由CVB_3感染引起的Hela细胞病变的抑制作用 | 第46-47页 |
·统计分析方法 | 第47页 |
·实验结果 | 第47-53页 |
·病毒毒力 | 第47页 |
·各样品对Hela的细胞毒性 | 第47-52页 |
·各样品对由CVB_3引起的细胞病变(CPE)的抑制作用 | 第52-53页 |
·结论 | 第53-54页 |
6 体外抑制单纯疱疹病毒1型(HSV-1)的活性研究 | 第54-64页 |
·实验材料、试剂及仪器设备 | 第54-56页 |
·样品 | 第54-55页 |
·实验细胞株 | 第55页 |
·实验病毒株 | 第55页 |
·试剂 | 第55页 |
·仪器设备 | 第55-56页 |
·实验部分 | 第56-58页 |
·Vero细胞的培养和增殖 | 第56页 |
·病毒HSV-1的增殖 | 第56页 |
·病毒毒力测定 | 第56页 |
·MTT比色法测定各样品对Vero细胞的毒性 | 第56-57页 |
·测定各样品对由HSV-1感染引起的Vero细胞病变的抑制作用 | 第57页 |
·统计分析方法 | 第57-58页 |
·实验结果 | 第58-63页 |
·病毒毒力 | 第58页 |
·各样品对Vero的细胞毒性 | 第58-63页 |
·各样品对由HSV-1引起的细胞病变(CPE)的抑制作用 | 第63页 |
·结论 | 第63-64页 |
7 多糖促进胰岛素分泌的预实验 | 第64-67页 |
·材料和方法 | 第64-65页 |
·样品和试剂 | 第64页 |
·胰岛素含量测定 | 第64-65页 |
·胰岛细胞培养 | 第65页 |
·多糖促进胰岛素分泌 | 第65页 |
·统计方法 | 第65页 |
·结果 | 第65-66页 |
·讨论 | 第66-67页 |
结束语 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-75页 |
附录 | 第75-86页 |
发表的论文 | 第86-87页 |
致谢 | 第87页 |