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坪草腐霉病菌除草活性毒素组分的分离鉴定与突变菌株的DDRT差异显示分析

引言第1-11页
第一章 坪草腐霉病菌毒素产生除草活性物质的条件优化第11-30页
 1 材料与方法第12-18页
   ·材料第12-13页
     ·供试菌种第12页
     ·供试培养基第12-13页
     ·供试植物第13页
     ·供试试剂第13页
   ·方法第13-18页
     ·菌种的分离第13-14页
     ·菌饼的制备第14页
     ·菌种的鉴定第14页
     ·病菌粗毒素的制备第14-15页
     ·毒素产生条件的优化第15页
     ·病原菌培养过程中糖的利用率测定第15-16页
     ·菌株的紫外诱变第16-17页
     ·高除草活性诱变菌株的发酵试验第17页
     ·除草活性测定第17-18页
 2 结果与分析第18-27页
   ·菌种的分离纯化第18页
   ·PA1和PA5菌株的鉴定及生物学特性第18-20页
     ·PA1和PA5菌株的鉴定结果第18-19页
     ·PA1、PA5菌株在不同温度下的生长速率测定结果第19-20页
     ·菌种的保存条件第20页
   ·不同培养基对坪草腐霉菌产生除草活性物质的影响第20-21页
   ·坪草腐霉粗毒素对作物的安全性和杀草谱第21页
   ·影响坪草腐霉产生除草活性物质的条件第21-23页
     ·培养时间的影响第21-23页
     ·不同pH值的影响第23页
     ·振荡和静止培养的影响第23页
   ·孢子囊和卵孢子产生毒素对杂草的抑制作用第23页
   ·不同培养时间PD培养基中葡萄糖和PS培养基中蔗糖含量的变化第23-24页
   ·紫外线诱变菌株的生长量和对杂草的抑制作用第24-26页
     ·不同诱变菌株生长量第24-25页
     ·不同诱变菌株的毒素对杂草的抑制作用第25-26页
   ·诱变菌株发酵滤液pH值的变化及粗毒素除草生物活性测定第26-27页
 3 讨论第27-30页
第二章 坪草腐霉病菌具有除草活性组分分离纯化与结构鉴定第30-52页
 1 材料与方法第30-36页
   ·材料第30-31页
     ·供试菌种第30页
     ·供试培养基第30-31页
     ·供试植物第31页
     ·供试试剂第31页
     ·供试仪器第31页
   ·方法第31-36页
     ·粗毒素的制备第31页
     ·培养滤液中蛋白质的分离第31-32页
     ·影响除草活性物质分离的条件第32页
     ·菌丝中除草活性物质的提取第32页
     ·粗毒素中除草活性物质的初分离——萃取法第32-34页
     ·除草活性初分离物的性质鉴定第34页
     ·活性物质的分离——薄层层析法第34-35页
     ·除草活性组分的制备——高效液相色谱法第35页
     ·粗毒素和菌丝中白色油状物的分离和溶解度测定第35页
     ·除草活性组分的结构鉴定第35-36页
 2 结果与分析第36-49页
   ·不同有机溶剂萃取所得粗毒素对杂草种子萌发及生长抑制作用第36页
   ·分离蛋白质及蛋白质分离后的培养滤液粗毒素的除草活性测定第36页
   ·培养滤液不同pH值对除草活性的影响第36-37页
   ·培养滤液温度对除草活性的影响第37-38页
   ·培养滤液的盐浓度对除草活性物质萃取的影响第38页
   ·活性炭对培养滤液中的除草活性组分的吸附作用第38页
   ·菌丝提取物对杂草的生物活性第38页
   ·粗毒素中除草活性物质的初步分离第38-39页
   ·除草活性物质的官能团鉴定第39页
   ·除草活性物质的分离——薄层层析法第39-41页
     ·不同展开剂对除草活性物质的分离效果第39-40页
     ·不同Rf值物质的除草活性第40-41页
   ·除草活性组分的分离和制备——高效液相色谱法第41-44页
     ·Rf值为0.19的分离物除草活性组分的制备第41-42页
     ·Rf值为0.35的分离物除草活性组分的制备第42-43页
     ·Rf值为0.74的分离物除草活性组分的制备第43-44页
   ·除草活性组分的结构鉴定第44-46页
     ·组分Ⅰ的结构鉴定第44-46页
     ·邻苯二甲酸二甲酯的除草活性第46页
   ·粗毒素和菌丝提取物中白色油状物的分离及生物活性第46-49页
     ·粗毒素和菌丝提取物中白色油状物的分离第46-47页
     ·组分Ⅴ的结构鉴定第47-49页
     ·组分Ⅴ的生物活性测定第49页
 3 讨论第49-52页
第三章 坪草腐霉病菌毒素产生基因表达的差异第52-71页
 1 材料与方法第52-58页
   ·材料第52-53页
     ·供试菌种第52页
     ·供试培养基第52-53页
     ·试剂和引物第53页
     ·主要仪器和设备第53页
   ·方法第53-58页
     ·供试菌种培养不同时间菌丝的取样第53页
     ·供试菌株总RNA的提取第53-54页
     ·除去RNA中的DNA第54页
     ·cDNA第一链的合成第54页
     ·DDRT-PCR扩增第54-55页
     ·6%变性聚丙烯酰胺凝胶电泳第55-56页
     ·差异表达片段回收和二次PCR扩增第56页
     ·二次扩增产物的检测第56页
     ·感受态大肠杆菌细胞的制备第56页
     ·PCR产物与质粒载体的连接第56页
     ·转化大肠杆菌第56-57页
     ·质粒DNA提取第57页
     ·插入片段酶切检测第57页
     ·基因片段测序与序列分析第57-58页
 2 结果与分析第58-70页
   ·RNA提取结果第58页
   ·引物的选择第58-59页
   ·PCR扩增产物的分离第59页
   ·PA1菌株和PAM1菌株培养不同时间基因表达的差异第59-60页
   ·二次扩增结果第60-61页
   ·阳性克隆的筛选结果第61页
   ·插入片段的酶切检测结果第61-62页
   ·测序结果与分析第62-70页
 3 讨论第70-71页
结论第71-72页
参考文献第72-79页
附:图版1-12第79-86页
在读期间发表的学术论文第86页
个人简历第86-87页
致谢第87-143页

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