中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第一章:前言 | 第11-29页 |
·细胞凋亡及其生物学意义 | 第11-14页 |
·细胞凋亡的形态学特征 | 第11-12页 |
·细胞凋亡的生化特征 | 第12-13页 |
·细胞凋亡的生物学意义 | 第13-14页 |
·细胞凋亡的检测方法 | 第14-18页 |
·形态学观察法 | 第14页 |
·DNA分子水平的检测 | 第14-15页 |
·流式细胞术(Flow cytometry,FCM)检测法 | 第15-17页 |
·凋亡相关基因、蛋白和凋亡酶的检测 | 第17-18页 |
·细胞自噬、自噬的检测方法及与肿瘤的关系 | 第18-21页 |
·细胞自噬 | 第18-19页 |
·细胞自噬的检测方法 | 第19-20页 |
·自噬与肿瘤的关系 | 第20-21页 |
·云芝及云芝的抗肿瘤活性 | 第21-25页 |
·云芝 | 第21-22页 |
·云芝的抗肿瘤活性 | 第22-25页 |
·课题研究的目的和意义 | 第25页 |
·云芝的其他生物学活性 | 第25-29页 |
·免疫调节活性 | 第25-26页 |
·对中枢神经系统的作用 | 第26-27页 |
·对消化系统的作用 | 第27-28页 |
·抗衰老、抗氧化、抗病毒活性 | 第28-29页 |
第二章 材料与方法 | 第29-37页 |
·材料 | 第29页 |
·试剂 | 第29页 |
·主要仪器 | 第29-30页 |
·细胞培养 | 第30页 |
·实验方法 | 第30-37页 |
·云芝子实体五种不同提取物的提取分离 | 第30-31页 |
·MTT法测定云芝子实体五种提取物对不同肿瘤细胞的抑制作用 | 第31-32页 |
·溶液的配制 | 第31页 |
·接种细胞 | 第31-32页 |
·药物处理 | 第32页 |
·生长抑制率的测定 | 第32页 |
·统计学分析 | 第32页 |
·提取物对细胞周期的影响 | 第32-33页 |
·溶液的配制 | 第32页 |
·接种细胞 | 第32页 |
·药物处理 | 第32-33页 |
·PI单染检测细胞周期 | 第33页 |
·提取物诱导肿瘤细胞凋亡的活性分析 | 第33-35页 |
·溶液的配制 | 第33页 |
·接种细胞 | 第33页 |
·药物处理 | 第33-34页 |
·荧光显微镜观察细胞形态的变化 | 第34页 |
·透射电镜观察细胞超微结构的变化 | 第34页 |
·Annxin V/PI双染检测细胞凋亡 | 第34-35页 |
·提取物诱导肿瘤细胞自噬性死亡的初步分析 | 第35-37页 |
·溶液的配制 | 第35页 |
·接种细胞 | 第35页 |
·药物处理 | 第35页 |
·MDC染色检测细胞自噬性死亡 | 第35-37页 |
第三章 云芝子实体五种提取物体外对不同肿瘤细胞的抑制作用 | 第37-48页 |
·云芝子实体五种提取物得率 | 第37-38页 |
·MTT法测定云芝子实体五种提取物对不同肿瘤细胞的抑制作用 | 第38-44页 |
·五种提取物对Molt-4 细胞的抑制作用 | 第38-39页 |
·五种提取物对HepG2 细胞的抑制作用 | 第39-40页 |
·五种提取物对Caco-2 细胞的抑制作用 | 第40-42页 |
·五种提取物对MCF-7 细胞的抑制作用 | 第42-43页 |
·五种提取物对LNCaP细胞的抑制作用 | 第43-44页 |
·云芝子实体五种提取物处理后Molt-4 细胞周期的变化 | 第44-46页 |
·讨论 | 第46-48页 |
第四章 云芝子实体提取物对不同肿瘤细胞抑瘤机理的探析 | 第48-67页 |
·AO/EB双染观察结果 | 第48-52页 |
·细胞超微结构观察结果 | 第52-55页 |
·Annexin V/PI 双染流式细胞仪分析结果 | 第55-61页 |
·对Molt-4 细胞凋亡的影响 | 第55-57页 |
·对HepG2 细胞凋亡的影响 | 第57-58页 |
·对Caco-2 细胞凋亡的影响 | 第58-59页 |
·对MCF-7 细胞凋亡的影响 | 第59-60页 |
·对LNCaP细胞凋亡的影响 | 第60-61页 |
·MDC染色检测提取物诱导肿瘤细胞自噬性死亡的结果 | 第61-64页 |
·讨论 | 第64-67页 |
总结 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-76页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第76页 |