| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 目次 | 第6-10页 |
| 缩略语 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第11-13页 |
| 2 实验研究 | 第13-38页 |
| ·实验一 动物模型的建立 | 第13-28页 |
| ·实验材料 | 第13-14页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·实验试剂 | 第13-14页 |
| ·主要仪器 | 第14页 |
| ·实验方法 | 第14-15页 |
| ·动物分组 | 第14页 |
| ·造模方法 | 第14-15页 |
| ·观测指标及测试方法 | 第15-17页 |
| ·一般状态观察 | 第15页 |
| ·血脂、血液流变学、MDA检测 | 第15页 |
| ·组织形态学观察 | 第15-16页 |
| ·免疫组织化学染色光镜下观测 | 第16-17页 |
| ·统计方法 | 第17页 |
| ·实验结果 | 第17-28页 |
| ·一般状态观察 | 第17-18页 |
| ·各组小鼠体重变化 | 第18-19页 |
| ·各组小鼠血脂指标的变化 | 第19页 |
| ·各组小鼠血液流变学的变 | 第19-22页 |
| ·各组小鼠血清MDA的变化 | 第22-23页 |
| ·各组小鼠视网膜外核层及视细胞层光镜下的变化 | 第23页 |
| ·各组小鼠视网膜外核层厚度光镜下变化 | 第23-24页 |
| ·各组小鼠外核层及视细胞层电镜下超微结构变化 | 第24-25页 |
| ·各组小鼠视细胞层Caspase-3表达的变化 | 第25页 |
| ·各组小鼠RPE厚度变化 | 第25-26页 |
| ·各组小鼠RPE细胞超微结构的变化 | 第26页 |
| ·各组小鼠RPE微绒毛ICAM-1表达变化 | 第26-27页 |
| ·各组小鼠脉络膜血管内皮ICAM-1表达变化 | 第27页 |
| ·其他改变 | 第27-28页 |
| ·实验二 黄斑康对实验性血脂异常光感受器影响的研究 | 第28-38页 |
| ·实验材料 | 第28页 |
| ·实验动物 | 第28页 |
| ·实验试剂和药品 | 第28页 |
| ·主要仪器、 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-29页 |
| ·动物分组 | 第28-29页 |
| ·给药方法和药物剂量 | 第29页 |
| ·观测指标及测试方法 | 第29页 |
| ·统计方法 | 第29页 |
| ·实验结果 | 第29-38页 |
| ·一般状态观察 | 第29-30页 |
| ·黄斑康对小鼠体重的影响 | 第30页 |
| ·黄斑康对小鼠血脂的影响 | 第30-31页 |
| ·黄斑康对小鼠血液流变性的影响 | 第31-33页 |
| ·黄斑康对小鼠MDA的影响 | 第33-34页 |
| ·黄斑康对小鼠光感受器的影响 | 第34-36页 |
| ·黄斑康对小鼠RPE的影响 | 第36-37页 |
| ·黄斑康对小鼠RPE微绒毛ICAM-1表达的影响 | 第37页 |
| ·黄斑康对小鼠脉络膜血管内皮ICAM-1表达的影响 | 第37-38页 |
| 3 讨论 | 第38-59页 |
| ·动物模型的评价 | 第38-44页 |
| ·模型动物的选择 | 第38-39页 |
| ·动物模型指标的选择 | 第39-41页 |
| ·动物模型的评价及与AMD相关性的探讨 | 第41-44页 |
| ·黄斑康对实验性血脂异常光感受器退变的影响 | 第44-59页 |
| ·祖国医学对血脂异常痰瘀病机的认识 | 第44-45页 |
| ·黄斑康药物组成及组方依据 | 第45-47页 |
| ·对照药物的选择 | 第47-48页 |
| ·黄斑康作用机制的探讨 | 第48-59页 |
| ·降低血脂水平、改善血液高粘状态 | 第48-50页 |
| ·增强机体抗氧化能力 | 第50-53页 |
| ·保护血管内皮细胞，促进RPE细胞结构修复，调节ICAM-1的表达 | 第53-56页 |
| ·抑制光感受器细胞凋亡 | 第56-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附图 | 第68-76页 |
| 综述 | 第76-87页 |
| 附表 | 第87-88页 |
| 声明 | 第88页 |
