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芒果苷糖酯衍生物的非水相酶促合成及其抗炎活性研究

中文摘要第1-19页
ABSTRACT第19-25页
中英文对照第25-26页
第一章 绪论第26-49页
 1 芒果苷研究概述第26-32页
   ·植物来源第26-27页
   ·理化性质及生理活性第27-29页
     ·MGF 的理化性质第27-28页
     ·MGF 的生理活性第28-29页
   ·MGF 的结构修饰第29-32页
     ·烷基化MGF第29-30页
     ·MGF 磺酸钠第30-31页
     ·MGF 钠盐第31页
     ·MGF 糖基化修饰第31-32页
 2 药物的生物药剂学分类系统第32-33页
 3 提高脂溶性的目的第33-34页
 4 生物催化和脂肪酶的应用第34-40页
   ·酶法结构修饰改性第34-35页
   ·脂肪酶的特性第35-36页
   ·有机介质中的酶催化第36-40页
     ·有机介质中脂肪酶催化研究进展第36-37页
     ·非水相酶催化反应的特点第37页
     ·水对非水相酶催化反应的影响第37-38页
     ·有机溶剂对非水相酶催化的影响第38-39页
     ·反应底物对非水相酶催化的影响第39页
     ·温度对非水相酶催化的影响第39页
     ·反应时间对非水相酶催化的影响第39页
     ·摇床振荡速度对非水相酶催化的影响第39-40页
     ·酶用量对非水相酶催化的影响第40页
 5 糖酯合成概述第40-41页
 6 本论文的研究思路和主要研究内容第41-42页
   ·研究思路第41-42页
   ·主要研究内容第42页
 参考文献第42-49页
第二章 芒果苷的生物药剂学性质研究第49-63页
 1 引言第49-50页
 2 实验仪器与材料第50-51页
   ·主要实验仪器第50-51页
   ·材料与试剂第51页
 3 实验部分第51-53页
   ·不同pH 缓冲溶液的配制第51-52页
   ·第52页
     ·线性关系考察第52页
     ·方法学验证第52页
   ·MGF 在不同pH 溶液中平衡溶解度的测定第52-53页
   ·MGF 油水分配系数的测定第53页
     ·MGF 正辛醇饱和溶液的制备第53页
     ·正辛醇饱和水溶液的制备第53页
     ·油水分配系数的测定第53页
 4 结果与讨论第53-59页
   ·HPLC 法测定MGF 含量第53-55页
     ·测定波长选择第53-54页
     ·流动相选择第54页
     ·线性关系第54-55页
   ·MGF 在不同pH 溶液中平衡溶解度第55-56页
   ·MGF 的油水分配系数第56-58页
   ·MGF 的BCS 性质及分类第58-59页
     ·MGF 的溶解性低第58页
     ·MGF 的通透性低第58-59页
 5 本章小结第59-60页
   ·MGF 溶解度低第59页
   ·MGF 溶解度随pH 增加而增大第59页
   ·MGF 油水分配系数小第59-60页
   ·MGF 属于低溶解性-低通透性的药物第60页
   ·提高MGF 的脂溶性很重要第60页
 参考文献第60-63页
第三章 芒果苷糖酯衍生物的设计与合成第63-79页
 1 引言第63-65页
 2 实验仪器与材料第65-67页
   ·仪器第65-66页
   ·材料与试剂第66-67页
 3 实验流程第67页
 4 实验部分第67-69页
   ·有机溶剂脱水第67页
   ·酶催化反应第67页
   ·薄层色谱监测第67-68页
   ·液相色谱监测第68页
   ·产物HPLC-MS 分析第68-69页
     ·MS 质谱参数第68-69页
     ·HPLC 色谱条件第69页
 5 结果与讨论第69-76页
   ·酶促反应条件的选择第69页
   ·反应过程的TLC 监测第69-70页
   ·反应过程的HPLC 监测第70-73页
     ·HPLC 检测条件的确定第70-71页
       ·检测波长的确定第70页
       ·流动相的选择第70-71页
     ·酰基供体为甲酸乙酯的反应液第71页
     ·酰基供体为乙酸乙酯的反应液第71-72页
     ·酰基供体为丙酸乙酯的反应液第72-73页
     ·酰基供体为丁酸乙酯、苯甲酸甲酯第73页
   ·产物的HPLC-MS/MS 分析第73-75页
     ·甲酰基MGF第73-74页
     ·乙酰基MGF第74页
     ·丙酰基MGF第74-75页
   ·产物稳定性考察第75-76页
     ·甲酰基MGF 稳定性第75-76页
     ·乙酰基MGF 稳定性第76页
     ·丙酰基MGF 稳定性第76页
 6 本章小结第76-77页
   ·成功合成甲酰基MGF、乙酰基MGF、丙酰基MGF第76-77页
   ·酰基供体C 原子数目影响脂肪酶催化转酯化效率第77页
   ·MGF 酰基化衍生物的脂溶性均增加第77页
   ·选择丙酰基MGF 作为下一步研究对象第77页
 参考文献第77-79页
第四章 非水相酶促合成6′-O-丙酰基芒果苷的研究第79-100页
 1 引言第79-81页
 2 实验仪器与材料第81-82页
   ·仪器第81页
   ·试剂与材料第81-82页
 3 实验部分第82-84页
   ·有机溶剂的脱水第82页
   ·酶法合成第82页
   ·液相色谱检测第82-83页
   ·产物结构鉴定第83-84页
     ·HPLC-MS 测定第83页
     ·NMR 测定第83-84页
   ·产物分离纯化第84页
     ·制备液相色谱条件第84页
     ·产物分离纯化流程第84页
   ·酶的重复利用第84页
 4 结果与讨论第84-96页
   ·脂肪酶的选择第84-85页
   ·反应溶剂的选择第85-86页
   ·加酶量对反应的影响第86-87页
   ·反应温度的选择第87-88页
   ·反应时间的确定第88-89页
   ·MGF 用量对合成的影响第89-90页
   ·丙酸乙酯用量对合成的影响第90-91页
   ·酶的重复利用对反应的影响第91页
   ·转速对反应的影响第91-92页
   ·水对反应的影响第92-93页
   ·产物结构确证第93-96页
     ·质谱第93-94页
     ·核磁共振光谱第94-96页
 5 本章小结第96页
 参考文献第96-100页
第五章 6′-O-丙酰基芒果苷的理化性质和稳定性研究第100-126页
 1 引言第100-101页
 2 实验仪器与材料第101-102页
   ·仪器第101-102页
   ·材料与试剂第102页
 3 实验部分第102-109页
   ·pH 缓冲溶液的配制第102-103页
   ·HPLC 测定PMGF第103-105页
     ·色谱条件第103-104页
     ·非生物样品中的含量测定方法学考察第104页
     ·血浆中的含量测定方法学考察第104-105页
   ·HPLC 测定MGF第105-106页
     ·色谱条件第105页
     ·非生物样品中的含量测定方法学考察第105-106页
     ·血浆中的含量测定方法学考察第106页
   ·PMGF 溶解度测定第106-107页
   ·PMGF 油水分配系数的测定第107页
     ·PMGF 正辛醇饱和溶液的制备第107页
     ·正辛醇饱和水溶液的制备第107页
     ·油水分配系数的测定第107页
   ·MGF 及PMGF 体外水解稳定性对比研究第107-109页
     ·MGF 及PMGF 在不同pH 溶液中的稳定性对比第107-108页
     ·MGF 及PMGF 人血浆中稳定性对比第108-109页
 4 结果与讨论第109-123页
   ·HPLC 测定PMGF 含量第109-111页
     ·非生物样品的HPLC 测定第109-110页
     ·血浆样品的HPLC 测定第110-111页
   ·HPLC 测定MGF第111-114页
     ·非生物样品中的HPLC 测定第111-112页
     ·血浆样品的HPLC 测定第112-114页
   ·PMGF 溶解度测定第114页
   ·PMGF 油水分配系数的测定第114-117页
   ·MGF 及PMGF 体外水解稳定性对比研究第117-123页
     ·MGF 及PMGF 在不同pH 缓冲溶液中的稳定性对比第117-121页
     ·MGF 及PMGF 人血浆中稳定性对比研究第121-123页
 5 本章小结第123-124页
   ·PMGF 溶解度与MGF 相近,并未显著降低第123页
   ·PMGF 油水分配系数显著提高第123-124页
   ·PMGF 在体外及血浆中均能水解为MGF第124页
 参考文献第124-126页
第六章 离体培养人肠菌群对MGF 及PMGF 的代谢研究第126-146页
 1 引言第126-127页
 2 实验仪器与材料第127-128页
   ·仪器第127页
   ·试剂与材料第127-128页
 3 实验部分第128-132页
   ·TSB 培养基的配制第128页
   ·药物溶液的配制第128页
   ·人肠道菌培养液的制备第128页
   ·离体厌氧培养人肠道菌对MGF 的代谢第128-129页
   ·离体厌氧培养人肠道菌对PMGF 的代谢第129页
   ·肠菌群培养液的HPLC 监测第129-131页
     ·色谱条件第129-130页
     ·PMGF 的HPLC 测定第130页
     ·MGF 的HPLC 测定第130-131页
   ·代谢产物的分离和纯化第131页
   ·代谢产物的鉴定第131-132页
     ·HPLC-MS 分析第131-132页
     ·NMR 分析第132页
 4 结果与讨论第132-143页
   ·HPLC 测定MGF 及PMGF 的含量第132-135页
     ·HPLC 测定PMGF 含量第132-133页
     ·HPLC 测定MGF 含量第133-135页
   ·含药肠菌群培养液的HPLC 监测第135-136页
   ·代谢产物的结构鉴定第136-140页
     ·代谢产物HPLC-MS 分析第136-137页
     ·代谢产物 NMR 分析第137-140页
   ·离体厌氧培养人肠道菌对MGF 的代谢第140-141页
   ·离体厌氧培养人肠道菌对PMGF 的代谢第141-143页
 5 本章小结第143-144页
   ·MGF 在肠道菌群作用下代谢为苷元(Norathyriol)第143页
   ·PMGF 在肠道菌群作用下先水解为MGF 再代谢为Norathyri第143-144页
   ·两者代谢特征相近第144页
   ·Norathyriol 的口服吸收机制及药效有待研究第144页
 参考文献第144-146页
第七章 芒果苷及6′-O-丙酰基芒果苷抗炎活性研究第146-156页
 1 引言第146-148页
 2 实验仪器与材料第148-149页
   ·实验仪器第148页
   ·实验材料第148-149页
 3 实验部分第149-151页
   ·二甲苯致小鼠耳廓肿胀实验第149页
     ·分组及给药方法第149页
     ·观察指标第149页
   ·MGF 及PMGF 对小鼠巨噬细胞炎性介质的影响第149-151页
     ·药品溶液的配制第149-150页
     ·RAW264.7 细胞的培养与传代第150页
     ·药物对RAW264.7 细胞释放炎性细胞因子的影响第150页
     ·IL-1 和TNF-α的测定(ELISA 法)第150页
     ·NO 的测定(Griess 法)第150-151页
   ·统计学处理第151页
 4 结果与讨论第151-153页
   ·二甲苯致小鼠耳廓肿胀度实验结果第151-152页
   ·MGF 及PMGF 对小鼠巨噬细胞炎性介质的影响第152-153页
 5 本章小结第153-154页
   ·MGF 及PMGF 在动物体内有显著抗炎作用第153-154页
   ·低浓度MGF 及PMGF 体外对NO、IL-1、TNF-α无抑制作用第154页
   ·MGF/PMGF 可能存在其他抗炎机制抑或代谢产物有抗炎作用第154页
 参考文献第154-156页
全文总结第156-160页
致谢第160-161页
综述第161-172页
 参考文献第167-172页
攻读学位期间发表学术论文第172页

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