| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-28页 |
| ·立题意义及背景 | 第10-13页 |
| ·手性化合物拆分的研究意义 | 第10-11页 |
| ·手性Cx化合物 | 第11页 |
| ·手性化合物合成的方法 | 第11-13页 |
| ·(R)-丁酸缩水甘油酯制备方法 | 第13-15页 |
| ·脂肪酶拆分手性化合物的研究进展 | 第15-23页 |
| ·微生物脂肪酶研究概况 | 第15-20页 |
| ·脂肪酶在手性拆分与合成中的应用概况 | 第20-22页 |
| ·脂肪酶在手性拆分与合成中存在的问题 | 第22页 |
| ·提高脂肪酶对映选择性的方法 | 第22-23页 |
| ·脂肪酶的固定化研究进展 | 第23-26页 |
| ·脂肪酶固定化方法研究概况 | 第23-25页 |
| ·纳米材料固定化酶的研究概况 | 第25-26页 |
| ·论文研究的目的、意义及研究方案 | 第26-28页 |
| 第二章 水相中脂肪酶选择性水解丁酸缩水甘油酯的研究 | 第28-44页 |
| ·实验材料与方法 | 第28-31页 |
| ·实验材料 | 第28-29页 |
| ·实验仪器 | 第29页 |
| ·主要试剂的配制 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-31页 |
| ·实验结果与讨论 | 第31-42页 |
| ·磷酸缓冲液中酶促拆分丁酸缩水甘油酯的条件实验 | 第31-37页 |
| ·响应面法对磷酸缓冲液中酶促拆分丁酸缩水甘油酯工艺条件的优化 | 第37-42页 |
| ·本章小结 | 第42-44页 |
| 第三章 有机相中脂肪酶选择性水解丁酸缩水甘油酯的研究 | 第44-51页 |
| ·实验材料与方法 | 第44-45页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·实验仪器 | 第45页 |
| ·主要试剂的配制 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45页 |
| ·实验结果与讨论 | 第45-50页 |
| ·本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 脂肪酶的固定化研究 | 第51-69页 |
| ·实验材料与方法 | 第51-54页 |
| ·实验材料 | 第51-52页 |
| ·实验仪器 | 第52页 |
| ·主要试剂的配制 | 第52-53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·结果与讨论 | 第54-67页 |
| ·纳米SiO_2固定化猪胰脂肪酶的条件试验 | 第54-58页 |
| ·纳米SiO_2固定化猪胰脂肪酶的酶学性能实验 | 第58-64页 |
| ·与海藻酸钠包埋法固定化猪胰脂肪酶的比较研究 | 第64-66页 |
| ·海藻酸钠固定化脂肪酶酶学性能的研究 | 第66页 |
| ·SiO_2水溶胶及其吸附酶样的显徽镜观察 | 第66-67页 |
| ·本章结论 | 第67-69页 |
| 第五章 固定化酶对映选择性水解丁酸缩水甘油酯的研究 | 第69-80页 |
| ·实验材料与方法 | 第69-70页 |
| ·实验材料 | 第69页 |
| ·实验仪器 | 第69页 |
| ·实验试剂 | 第69页 |
| ·实验方法 | 第69-70页 |
| ·实验结果与讨论 | 第70-79页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适pH的确定 | 第70-71页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适温度的确定 | 第71-72页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适底物浓度的确定 | 第72-73页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适酶用量的确定 | 第73-74页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适反应时间的确定 | 第74-75页 |
| ·固定化酶酶促拆分的最适振荡频率的确定 | 第75-76页 |
| ·正交试验对固定化酶酶促拆分条件优化 | 第76-78页 |
| ·固定化酶的重复拆分实验研究 | 第78-79页 |
| ·本章小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-88页 |
| 本文的创新之处与建议 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
