| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-13页 |
| 1．1 利用毛状根培养技术进行次生代谢产物生产的研究概况 | 第9-12页 |
| 1．2 何首乌组织培养研究概况 | 第12页 |
| 1．3 立题依据 | 第12-13页 |
| 第二章 何首乌毛状根的诱导及筛选 | 第13-24页 |
| 2．1 诱导材料的选择与培养 | 第13-14页 |
| 2．2 菌种的保藏与活化培养 | 第14-15页 |
| 2．2．1 培养基组成 | 第14页 |
| 2．2．2 菌种的活化培养 | 第14-15页 |
| 2．3 毛状根的诱导 | 第15-16页 |
| 2．3．1 无菌苗直接感染法 | 第15页 |
| 2．3．2 接种感染法 | 第15-16页 |
| 2．4 影响毛状根诱导率的四种因素 | 第16-20页 |
| 2．4．1 不同诱导方法对毛状根诱导率的影响 | 第16-17页 |
| 2．4．2 无菌苗不同部位对毛状根的诱导率的影响 | 第17-18页 |
| 2．4．3 不同外源生长素对毛状根诱导率的影响 | 第18-19页 |
| 2．4．4 不同菌株对毛状很诱导率的影响 | 第19-20页 |
| 2．5 毛状根的除菌 | 第20-24页 |
| 2．5．1 抗生素除菌 | 第21-22页 |
| 2．5．2 温度除菌 | 第22-24页 |
| 第三章 何首乌毛状根的鉴定 | 第24-39页 |
| 3．1 实验材料 | 第25-27页 |
| 3．2 实验方法 | 第27-34页 |
| 3．2．1 高压纸电泳 | 第27-28页 |
| 3．2．2 PCR扩增分析 | 第28-31页 |
| 3．2．2．1 植物DNA和毛状根DNA的提取 | 第28-29页 |
| 3．2．2．2 质粒DNA的提取 | 第29-30页 |
| 3．2．2．3 引物的选择 | 第30页 |
| 3．2．2．4 扩增反应步骤 | 第30-31页 |
| 3．2．3 Southern印迹杂交 | 第31-34页 |
| 3．2．3．1 原植物、毛状根及质粒DNA的提取 | 第31页 |
| 3．2．3．2 DNA的限制性内切酶酶解 | 第31页 |
| 3．2．3．3 琼脂糖凝胶电泳及DNA向尼龙膜的转移 | 第31-32页 |
| 3．2．3．4 PCR产物的探针标记 | 第32-33页 |
| 3．2．3．5 杂交、洗膜、显影及探针的去除 | 第33-34页 |
| 3．3 实验结果 | 第34-37页 |
| 3．4 实验结论 | 第37-39页 |
| 第四章 毛状根中蒽醌类化合物的检测 | 第39-47页 |
| 4．1 蒽醌类化合物的提取 | 第39-40页 |
| 4．2 蒽醌类化合物的薄层层析定性鉴别 | 第40-41页 |
| 4．3 蒽醌类化合物的高效液相定量分析 | 第41-47页 |
| 4．3．1 实验仪器与试剂 | 第41-42页 |
| 4．3．2 HPLC色谱条件 | 第42页 |
| 4．3．3 样品溶液的制备 | 第42页 |
| 4．3．4 标准曲线的制备 | 第42-43页 |
| 4．3．5 实验结果 | 第43-47页 |
| 第五章 毛状根液体培养条件的优化及生长动力学考察 | 第47-58页 |
| 5．1 毛状根液体培养基的选择 | 第47-49页 |
| 5．2 毛状根液体培养的生长动力学考察 | 第49-57页 |
| 5．2．1 主要仪器与药品、试剂 | 第49页 |
| 5．2．2 实验方法 | 第49-53页 |
| 5．2．2．1 毛状根的液体培养及收获 | 第49-50页 |
| 5．2．2．2 培养基中残存蔗糖的测定 | 第50-51页 |
| 5．2．2．3 培养基中NH_4~+的测定 | 第51-52页 |
| 5．2．2．4 培养基中NO_3~-的测定 | 第52页 |
| 5．2．2．5 培养基中PO_4~（3-）的测定 | 第52-53页 |
| 5．2．3 结果与讨论 | 第53-57页 |
| 5．2．3．1 生长量的累积曲线 | 第53-54页 |
| 5．2．3．2 蔗糖的消耗代谢曲线 | 第54-55页 |
| 5．2．3．3 PO_4~（3-）的消耗代谢曲线和pH的变化曲线 | 第55-56页 |
| 5．2．3．4 NH_4~-和NO_3~-的消耗代谢曲线 | 第56-57页 |
| 5．3 实验结论 | 第57-58页 |
| 第六章 结论与讨论 | 第58-64页 |
| 6．1 结论 | 第58-59页 |
| 6．2 讨论 | 第59-64页 |
| 参考文献 | 第64-71页 |
| 附录 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
