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生长转化因子TGF-β1基因转染对大鼠脂肪干细胞的影响

中英文缩略语表第1-8页
中文摘要第8-9页
英文摘要第9-11页
引言第11-13页
材料与方法第13-30页
 1 实验材料第13-14页
     ·试剂和材料第13-14页
     ·仪器设备第14页
 2 实验方法第14-29页
     ·大鼠脂肪干细胞分离和培养第14-15页
     ·MTT法检测细胞的增殖情况第15页
     ·脂肪干细胞表面分子标志的鉴定(免疫荧光法)第15页
     ·流式细胞法检测ADSCs表面抗原表达第15-16页
     ·含TGF-β1基因的重组腺病毒构建第16-17页
       ·TGF-β1基因的扩增和克隆第16页
       ·引物设计与合成第16页
       ·PCR扩增体系及条件第16页
       ·克隆构建第16-17页
         ·载体、片段双酶切第16页
         ·连接第16-17页
         ·转化鉴定第17页
         ·筛选克隆第17页
     ·腺病毒(Ad)重组质粒制备第17-20页
       ·重组质粒pShuttle-IRES-hrGFP-1/TGF-β1小量抽提第17-18页
       ·重组质粒pShuttle-IRES-hrGFP-1/TGF-β1酶切第18-20页
     ·腺病毒产生和扩增第20页
       ·重组腺病毒质粒通过lipofectamine 2000转染AD-293细胞第20页
     ·裂解AD-293细胞收获病毒上清第20-21页
     ·腺病毒扩增第21页
     ·病毒滴度值测定第21页
     ·重组腺病毒转染ADSCs第21-22页
       ·腺病毒感染条件MOI的确定第21-22页
     ·病毒转染ADSCs,细胞各项检测第22页
       ·腺病毒转染第22页
       ·ELISA检测转染后细胞中TGF-β1的表达情况第22页
     ·Western blot检测转染后TGF-β1,collagenⅡ的表达情况第22-23页
       ·BCA法蛋白定量和SDS-PAGE电泳第23页
       ·根据样品蛋白含量向每孔加入等蛋白量的样品第23页
         ·膜封闭和抗体孵育第23页
         ·结果检测第23页
     ·重组腺病毒诱导ADSCs的软骨分化第23页
     ·ELISA检测TGF-β1第23-24页
     ·提取蛋白第24页
     ·BCA法蛋白定量第24-25页
     ·SDS-PAGE电泳第25-26页
       ·聚丙烯酰胺凝胶的配制第25-26页
     ·蛋白转移第26页
     ·细胞总RNA的提取第26-27页
     ·RT-PCR分析基因表达情况第27-28页
     ·Alcian blue染色第28页
     ·细胞高密度培养和免疫组化第28页
     ·石蜡切片免疫组化第28-29页
 3 统计方法第29-30页
实验结果第30-50页
 1 细胞培养结果第30-34页
     ·普通光学显微镜观测细胞形态第30页
     ·生长曲线结果第30-31页
     ·免疫荧光结果第31页
     ·流式细胞仪结果第31-34页
 2. 克隆结果第34-36页
     ·克隆构建第34-35页
     ·酶切鉴定结果第35页
     ·0.8%琼脂糖凝胶电泳观察酶切结果第35-36页
     ·PCR鉴定第36页
 3 腺病毒转染ADSCs结果第36-50页
     ·酶切鉴定第36-37页
     ·细胞图片第37-38页
     ·病毒PCR鉴定第38页
     ·病毒滴度值测定第38页
     ·共聚焦显微镜观察第38-41页
     ·阳性表达率的流式分析第41-42页
     ·MTT法检测细胞活力第42-43页
     ·克隆形成能力检测第43-44页
     ·样品中TGF-β1浓度第44页
     ·WB结果第44-45页
     ·ELISA检测转染后细胞中TGF-β1的表达情况第45-46页
     ·RT-PCR检测转染后ADSCs中软骨形成相关基因的表达情况第46-47页
     ·GAG含量检测第47-48页
     ·细胞免疫组化第48-50页
讨论分析第50-55页
结语第55-56页
参考文献第56-62页
附录一:综述第62-78页
附录二:在读期间科研成果一览第78-79页
致谢第79-80页

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