| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 引言 | 第13-21页 |
| 1 奶牛瘤胃需氧及兼性厌氧菌的国内外研究进展 | 第13-14页 |
| 2 奶牛机体矿物质元素的国内外研究进展 | 第14-15页 |
| 3 16S rDNA 基因理论 | 第15-17页 |
| 4 矿物质元素 | 第17-20页 |
| 5 试验检测的指标及意义 | 第20-21页 |
| 试验一 试验奶牛瘤胃需氧及兼性厌氧菌的分离、鉴定与动态变化研究 | 第21-52页 |
| 1 材料与方法 | 第21-34页 |
| ·试验材料 | 第21-24页 |
| ·试验日粮及设计 | 第24-25页 |
| ·日粮组成 | 第24-25页 |
| ·试验设计 | 第25页 |
| ·试验方法 | 第25-34页 |
| ·瘤胃液的采集及pH 值测定 | 第25-26页 |
| ·瘤胃细菌的培养、镜检与计数 | 第26页 |
| ·瘤胃细菌的分离、传代与保存 | 第26页 |
| ·瘤胃细菌的 PCR-16S rDNA 分析 | 第26-34页 |
| ·瘤胃试验菌株的复苏和培养 | 第26页 |
| ·试验菌株模板 DNA 的提取 | 第26-27页 |
| ·操作步骤 | 第26-27页 |
| ·模板DNA 的检测 | 第27页 |
| ·试验菌株16S rDNA基因的PCR扩增 | 第27-28页 |
| ·PCR 产物的回收和纯化 | 第28-29页 |
| ·PCR产物的回收、纯化 | 第28-29页 |
| ·胶回收的检测 | 第29页 |
| ·16S rDNA 基因的克隆、测序 | 第29-34页 |
| ·重组载体pT16S rDNA 的构建 | 第29-31页 |
| ·重组载体的转化 | 第31-32页 |
| ·pT16S rDNA 单克隆细菌的培养 | 第32页 |
| ·重组质粒 DNA 的提取 | 第32-33页 |
| ·pT16S rDNA 的单/双酶切鉴定 | 第33页 |
| ·测序 | 第33-34页 |
| ·细菌16S rDNA 鉴定、同源性分析与系统发育树的构建 | 第34页 |
| 2 试验结果 | 第34-49页 |
| ·瘤胃液pH 值 | 第34-35页 |
| ·细菌菌落形态观察 | 第35页 |
| ·细菌的染色、镜检结果 | 第35-36页 |
| ·细菌模板DNA 的电泳图谱 | 第36-37页 |
| ·各菌株16S rDNA基因PCR扩增电泳图谱 | 第37页 |
| ·PCR产物回收后的电泳图谱 | 第37-38页 |
| ·pT16S rDNA 的 HindШ单酶切图谱 | 第38页 |
| ·pT16S rDNA 的HindШ＋EcoRⅠ双酶切图谱 | 第38-39页 |
| ·各菌株16S rDNA 基因测序结果 | 第39-43页 |
| ·各菌株16S rDNA 基因 BLAST 比对结果 | 第43-44页 |
| ·各菌株16S rDNA 基因系统发育树的建立 | 第44-46页 |
| ·无根16S rDNA 序列系统发育树 | 第44-45页 |
| ·有根16S rDNA 序列系统发育树 | 第45-46页 |
| ·16S rDNA 基因部分序列分析 | 第46-48页 |
| ·不同精料梯度日粮条件下所分离瘤胃细菌的动态变化结果 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 试验二 日粮对试验奶牛血清中部分矿物质元素代谢影响的研究 | 第52-63页 |
| 1 材料与方法 | 第52-56页 |
| ·试验动物 | 第52页 |
| ·样品的采集与处理 | 第52页 |
| ·样品的采集 | 第52页 |
| ·样品的处理 | 第52页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第52-53页 |
| ·主要配制试剂 | 第53页 |
| ·检测项目与方法 | 第53-56页 |
| 2 试验结果 | 第56-60页 |
| ·血清中Ca、P、Mg、Na、K 含量的测定结果 | 第56-58页 |
| ·血清中Zn C、u M、n F、e 含量的测定结果 | 第58-60页 |
| 3 讨论 | 第60-63页 |
| ·日粮精料水平与奶牛机体常量元素含量变化关系 | 第60-61页 |
| ·日粮精料水平与奶牛机体微量元素含量变化关系 | 第61-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简介 | 第75-76页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第76页 |
