| 中文摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-18页 |
| 缩略词表 | 第19-21页 |
| 前言 | 第21-23页 |
| 第一部分 理论研究 | 第23-29页 |
| 1 肾脏纤维化是慢性肾脏疾病发生和进展的实质性病理表现 | 第23-24页 |
| 2 上皮细胞-间质细胞转分化（EMT）是肾纤维化的关键 | 第24-25页 |
| 3 Wnt/β-catenin信号通路调控促进肾纤维化 | 第25-27页 |
| 4 湿热血瘀证是慢性肾衰竭的重要病机 | 第27-29页 |
| 第二部分 实验研究 | 第29-70页 |
| 实验一：清肾颗粒对UUO大鼠一般状况及肾功能、尿蛋白的影响 | 第29-35页 |
| 1 材料 | 第29页 |
| 1.1 实验动物 | 第29页 |
| 1.2 实验药物 | 第29页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第29页 |
| 2 实验方法 | 第29-30页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第29页 |
| 2.2 模型复制 | 第29-30页 |
| 2.3 给药方法 | 第30页 |
| 2.4 标本留取 | 第30页 |
| 2.5 指标检测 | 第30页 |
| 2.6 统计学方法 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-35页 |
| 3.1 各组大鼠行为和体态变化的比较 | 第30-31页 |
| 3.2 各组大鼠体重变化的比较 | 第31-32页 |
| 3.3 各组大鼠BUN、Scr比较 | 第32-34页 |
| 3.4 各组大鼠24小时尿蛋白定量比较 | 第34-35页 |
| 实验二：清肾颗粒对UUO大鼠肾组织形态学的影响 | 第35-42页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 1.1 实验动物 | 第35页 |
| 1.2 实验药物 | 第35页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第35-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-38页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第36页 |
| 2.2 模型复制 | 第36页 |
| 2.3 给药方法 | 第36页 |
| 2.4 标本留取 | 第36页 |
| 2.5 各组大鼠肾脏病理形态学检查 | 第36-38页 |
| 2.6 统计学处理 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-42页 |
| 3.1 各组大鼠肾组织肉眼观察比较 | 第38-39页 |
| 3.2 各组大鼠肾脏病理形态学比较 | 第39-42页 |
| 实验三：清肾颗粒对UUO大鼠肾组织细胞外基质表达的影响 | 第42-50页 |
| 1 材料 | 第42-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第42页 |
| 1.2 实验药物 | 第42页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第42-44页 |
| 2 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第44页 |
| 2.2 模型复制 | 第44页 |
| 2.3 给药方法 | 第44页 |
| 2.4 标本留取 | 第44页 |
| 2.5 免疫组织化学法检测肾脏组织中Col-Ⅰ、FN的表达情况 | 第44-45页 |
| 2.6 Western blot法检测肾脏组织中Col-Ⅰ、FN的蛋白表达 | 第45-46页 |
| 2.7 统计学处理 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-50页 |
| 3.1 各组大鼠肾组织Col-Ⅰ、FN免疫组化评分比较 | 第46-49页 |
| 3.2 各组大鼠肾脏组织Col-Ⅰ、FN蛋白表达情况比较（Westernblot法） | 第49-50页 |
| 实验四：清肾颗粒对UUO大鼠肾小管上皮细胞转分化的影响 | 第50-57页 |
| 1 材料 | 第50-51页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 实验药物 | 第50页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第50-51页 |
| 2 实验方法 | 第51-52页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第51页 |
| 2.2 模型复制 | 第51页 |
| 2.3 给药方法 | 第51页 |
| 2.4 标本留取 | 第51页 |
| 2.5 免疫组化法检测肾组织中α-SMA、E-cadherin的表达情况.31 | 第51页 |
| 2.6 Western blot法检测肾脏组织中α-SMA、E-cadherin的蛋白含量。 | 第51页 |
| 2.7 统计学处理 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-57页 |
| 3.1 各组大鼠肾组织α-SMA、E-cadherin免疫组化评分比较 | 第52-55页 |
| 3.2 各组大鼠肾脏组织α-SMA、E-cadherin表达情况比较（Westernblot法） | 第55-57页 |
| 实验五：清肾颗粒对UUO大鼠肾组织Wnt/β-catenin信号通路的影响 | 第57-63页 |
| 1 材料 | 第57-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第57页 |
| 1.2 实验药物 | 第57页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第57-58页 |
| 2 实验方法 | 第58-60页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第58页 |
| 2.2 模型复制 | 第58页 |
| 2.3 给药方法 | 第58页 |
| 2.4 标本留取 | 第58页 |
| 2.5.Western blot法检测肾组织中Wnt1、P-GSK-3β、β-catenin的蛋白含量 | 第58页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR法检测肾组织中Wnt1、P-GSK-3β、β-catenin等mRNA表达水平 | 第58-60页 |
| 2.7 统计学处理 | 第60页 |
| 3 结 果 | 第60-63页 |
| 3.1 各组大鼠肾脏组织Wnt1、P-GSK-3β、β-catenin蛋白表达情况比较（Western blot法） | 第60-61页 |
| 3.2 实时荧光定量PCR法检测肾脏组织中Wnt1、P-GSK-3β、β-catenin等mRNA表达水平比较 | 第61-63页 |
| 实验六：清肾颗粒对UUO大鼠非梗阻侧肾脏肾重/体重及病理形态学的影响 | 第63-70页 |
| 1 材料 | 第63页 |
| 1.1 实验动物 | 第63页 |
| 1.2 实验药物 | 第63页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器 | 第63页 |
| 2 实验方法 | 第63-64页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第63页 |
| 2.2 模型复制 | 第63页 |
| 2.3 给药方法 | 第63页 |
| 2.4 标本留取 | 第63页 |
| 2.5 非梗阻侧肾脏组织病理病形态学检查 | 第63-64页 |
| 2.6 统计学处理 | 第64页 |
| 3 结果 | 第64-70页 |
| 3.1 各组大鼠非梗阻侧肾重/体重变化的比较 | 第64-65页 |
| 3.2 非梗阻侧肾组织肉眼观察比较3.3 非梗阻侧肾脏病理学检查比较 | 第65-70页 |
| 第三部分 讨论 | 第70-80页 |
| 1 肾小管上皮细胞转分化与肾纤维化 | 第70-73页 |
| 2 Wnt/β-catenin信号通路与肾纤维化 | 第73-75页 |
| 3 单侧输尿管梗阻（UUO）模型与肾间质纤维化 | 第75-76页 |
| 4 单侧输尿管梗阻（UUO）后对非梗阻侧肾脏的影响 | 第76-77页 |
| 5 阳性药物贝那普利的选择 | 第77页 |
| 6 清热化湿祛瘀法理论基础及清肾颗粒的组方特点 | 第77-78页 |
| 7 清肾颗粒对UUO大鼠的影响 | 第78-80页 |
| 7.1 改善生存质量 | 第78-79页 |
| 7.2 改善肾功能 | 第79页 |
| 7.3 减少24h尿蛋白定量 | 第79页 |
| 7.4 减轻大鼠肾脏病理损害 | 第79页 |
| 7.5 抑制肾小管EMT，减少ECM积聚 | 第79页 |
| 7.6 抑制Wnt/β-catenin信号通路，改善肾纤维化7.7 改善UUO大鼠非梗阻侧肾脏病理损害 | 第79-80页 |
| 第四部分 总结 | 第80-82页 |
| 1 研究结论 | 第80页 |
| 2 创新点 | 第80-81页 |
| 3 不足与展望 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-96页 |
| 附录一：综述 | 第96-110页 |
| 参考文献 | 第103-110页 |
| 附录二：研究生在学期间发表论文及科研奖励 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
