| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 前言 | 第13-29页 |
| 1 多糖的分级 | 第13-16页 |
| ·超滤法 | 第13-14页 |
| ·柱层析法分级 | 第14-15页 |
| ·有机溶剂法 | 第15页 |
| ·季铵盐沉淀法 | 第15页 |
| ·制备性区域电泳法 | 第15页 |
| ·金属络合物法 | 第15页 |
| ·盐析法 | 第15-16页 |
| 2 多糖的结构表征 | 第16-20页 |
| ·纯度鉴定 | 第16-17页 |
| ·凝胶柱层析法 | 第16-17页 |
| ·超离心法 | 第17页 |
| ·高压电泳法 | 第17页 |
| ·比旋光度法 | 第17页 |
| ·HPLC 法 | 第17页 |
| ·分子量测定 | 第17-20页 |
| ·HPLC 法 | 第18页 |
| ·粘度法 | 第18页 |
| ·渗透压法 | 第18页 |
| ·蒸汽压法 | 第18页 |
| ·光散射法 | 第18-19页 |
| ·端基分析法 | 第19-20页 |
| ·糖链结构测定 | 第20页 |
| 3 多糖的生物活性 | 第20-22页 |
| ·降血糖活性 | 第20页 |
| ·抗氧化活性 | 第20-21页 |
| ·抗凝血活性 | 第21页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第21页 |
| ·抗菌活性 | 第21-22页 |
| 4 多糖金属络合物及降血糖活性 | 第22-28页 |
| ·与降血糖有关的金属离子 | 第22-24页 |
| ·金属元素铬（Cr） | 第22-23页 |
| ·金属元素铜（Cu） | 第23页 |
| ·金属元素锌（Zn） | 第23页 |
| ·金属元素钒（V） | 第23-24页 |
| ·金属元素硒（Se） | 第24页 |
| ·其他金属元素 | 第24页 |
| ·多糖金属络合物的制备方法 | 第24-26页 |
| ·多糖与铬的络合物 | 第24页 |
| ·多糖与铜的络合物 | 第24-25页 |
| ·多糖与锌的络合物 | 第25-26页 |
| ·多糖与硒的络合物 | 第26页 |
| ·多糖金属配合物的表征方法 | 第26-27页 |
| ·红外光谱（IR） | 第26页 |
| ·紫外光谱（UV） | 第26页 |
| ·元素分析和电感耦合等离子体原子发射光谱（ICP-AES） | 第26-27页 |
| ·核磁共振（NMR）与电子自旋(顺磁)共振（ESR-EPR） | 第27页 |
| ·热重分析法（TGA） | 第27页 |
| ·X 射线衍射 | 第27页 |
| ·多糖金属络合物的降血糖作用 | 第27-28页 |
| 5 课题思路及技术路线 | 第28-29页 |
| 第一章 藻酸双酯钠的分级制备及降血糖活性研究 | 第29-55页 |
| 1 材料与仪器 | 第29-30页 |
| ·实验材料 | 第29-30页 |
| ·实验仪器 | 第30页 |
| 2 实验方法 | 第30-37页 |
| ·PSS 的分级及其分级组分的结构表征 | 第30-34页 |
| ·PSS 的分级 | 第30-32页 |
| ·PSS 及其分级组分的有机硫含量测定 | 第32-33页 |
| ·PSS 及其分级组分分子量的测定 | 第33-34页 |
| ·分子量分布 | 第34页 |
| ·色谱条件 | 第34页 |
| ·测定方法 | 第34页 |
| ·PSS 及其分级组分的体外降糖作用评价 | 第34-35页 |
| ·PSS 及其分级组分的抗氧化活性评价 | 第35-36页 |
| ·VC、PSS 原料、PSS-C4 和PSS-C5 不同浓度溶液的配制 | 第35页 |
| ·对DPPH·的清除实验 | 第35页 |
| ·对超氧自由基O_2~-·的清除实验 | 第35-36页 |
| ·体内降血糖动物实验 | 第36-37页 |
| ·胰岛素抵抗实验 | 第36-37页 |
| ·对四氧嘧啶致糖尿病小鼠的降血糖作用 | 第37页 |
| 3 结果与讨论 | 第37-55页 |
| ·PSS 分级制备及硫含量和分子量测定 | 第37-42页 |
| ·超滤分级制备结果 | 第37页 |
| ·有机硫含量测定结果 | 第37-39页 |
| ·分子量测定结果 | 第39-42页 |
| ·PSS-C5 组分的分子量分布测定结果 | 第42-43页 |
| ·标准曲线绘制 | 第42页 |
| ·样品测定结果 | 第42-43页 |
| ·PSS 及分级组分的降血糖生物活性 | 第43-44页 |
| ·抗氧化活性测定 | 第44-49页 |
| ·不同浓度VC、PSS、PSS-C4 和PSS-C5 对DPPH·的清除能力 | 第44-46页 |
| ·相同浓度下各样品对DPPH·的清除能力 | 第46-48页 |
| ·不同浓度V_c、PSS PSS-C4 和PSS-C5 对O_2~-·的清除能力 | 第48-49页 |
| ·动物实验结果 | 第49-55页 |
| ·对小鼠胰岛素抵抗的影响 | 第49-51页 |
| ·PSS 和PSS-C5 对四氧嘧啶型糖尿病小鼠的影响 | 第51-55页 |
| 第二章 藻酸双酯钠铬络合物的制备、表征及其降血糖活性 | 第55-69页 |
| 1 材料与仪器 | 第55-56页 |
| ·实验材料 | 第55页 |
| ·实验仪器 | 第55-56页 |
| 2 实验方法 | 第56-59页 |
| ·PSS 铬络合物的合成及结构表征 | 第56-58页 |
| ·正交试验设计 | 第56页 |
| ·PSS-Cr 络合物的制备 | 第56页 |
| ·PSS-Cr 络合物纯化 | 第56-57页 |
| ·PSS-Cr 络合物中铬含量测定 | 第57页 |
| ·红外与紫外光谱分析 | 第57页 |
| ·硫酸根与羧酸根比值测定 | 第57-58页 |
| ·PSS-CR 和PSS-C5-CR 络合物的规模化制备 | 第58页 |
| ·动物实验 | 第58-59页 |
| ·胰岛素抵抗实验 | 第58页 |
| ·四氧嘧啶型糖尿病小鼠的降血糖实验 | 第58-59页 |
| ·PSS-Cr 对小鼠急性毒性实验 | 第59页 |
| 3 实验与讨论 | 第59-69页 |
| ·PSS 和PSS-CR 络合物制备 | 第59-63页 |
| ·正交试验与优化条件 | 第59-61页 |
| ·PSS 和PSS-C5 铬络合物的大量制备 | 第61-63页 |
| ·PSS-CR 络合物的理化性质 | 第63页 |
| ·PSS-CR 络合物的结构表征 | 第63-65页 |
| ·PSS-Cr 络合物的UV 表征 | 第63-64页 |
| ·PSS-Cr 络合物的FTIR 表征 | 第64页 |
| ·硫酸根与羧酸根比值变化 | 第64-65页 |
| ·动物实验结果 | 第65-69页 |
| ·小鼠胰岛素抵抗作用 | 第65-68页 |
| ·PSS 和PSS-C5 对四氧嘧啶型糖尿病小鼠的影响 | 第68页 |
| ·PSS-Cr 对小鼠急性毒性实验结果 | 第68-69页 |
| 小结 | 第69-70页 |
| 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |
| 发表的学术论文 | 第77页 |
