| 缩略语表 | 第1-11页 |
| 中文摘要 | 第11-15页 |
| 英文摘要 | 第15-20页 |
| 前言 | 第20-22页 |
| 文献回顾 | 第22-41页 |
| 正文 | 第41-82页 |
| 实验一 实验性自身免疫性脑脊髓炎小鼠模型的建立与评价 | 第41-52页 |
| 0 引言 | 第41-42页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| ·实验动物及分组 | 第42页 |
| ·主要试剂 | 第42-43页 |
| ·主要仪器 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-47页 |
| ·小鼠EAE 模型的诱导 | 第43-44页 |
| ·组织取材和冰冻切片 | 第44-45页 |
| ·组织HE 染色 | 第45-46页 |
| ·组织LFB 髓鞘染色 | 第46-47页 |
| 3 结果 | 第47-49页 |
| ·EAE 症状评分及发病率 | 第47-48页 |
| ·神经组织病理学改变 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-52页 |
| 实验二 Gr-1~+/CD11b~+细胞在 EAE 中的变化及在 CNS 病灶中存在的形态学证据 | 第52-61页 |
| 0 引言 | 第52页 |
| 1 材料 | 第52-53页 |
| ·实验动物及分组 | 第52-53页 |
| ·主要试剂 | 第53页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| 2 方法 | 第53-57页 |
| ·小鼠EAE 模型的诱导 | 第53-54页 |
| ·组织取材和冰冻切片 | 第54页 |
| ·免疫荧光染色 | 第54-55页 |
| ·脾脏及CNS 中淋巴细胞的提取 | 第55-57页 |
| ·流式细胞检测Gr-1~+/CD11b~+细胞 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-60页 |
| ·免疫荧光染色结果 | 第57-58页 |
| ·流式细胞检测结果 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 实验三 PD-L1 分子在EAE 动物Gr-1~+/CD11b+细胞中的表达及对体外 T细胞增殖的影响 | 第61-71页 |
| 0 引言 | 第61页 |
| 1 材料 | 第61-63页 |
| ·实验动物及分组 | 第61-62页 |
| ·主要试剂 | 第62页 |
| ·主要仪器 | 第62-63页 |
| 2 方法 | 第63-66页 |
| ·小鼠EAE 模型的诱导 | 第63页 |
| ·组织取材及免疫荧光染色 | 第63页 |
| ·流式细胞检测脾脏Gr-1+/CD11b~+细胞的PD-L1 表达 | 第63-64页 |
| ·正常小鼠脾脏CD4+和CD8+ T 细胞的提纯 | 第64-65页 |
| ·EAE 小鼠CNS 中Gr-1+/CD11b~+细胞的提纯 | 第65-66页 |
| ·体外T 细胞增殖实验 | 第66页 |
| 3 结果 | 第66-69页 |
| ·免疫荧光染色结果 | 第66-67页 |
| ·流式细胞检测结果 | 第67-69页 |
| ·Gr-1+/CD11b~+细胞抑制体外T 细胞增殖 | 第69页 |
| 4 讨论 | 第69-71页 |
| 实验四 慢性持续型EAE 对神经干/祖细胞增殖变化影响的初步探讨 | 第71-82页 |
| 0 引言 | 第71页 |
| 1 材料 | 第71-72页 |
| ·实验动物及分组 | 第71-72页 |
| ·主要试剂 | 第72页 |
| ·主要仪器 | 第72页 |
| 2 方法 | 第72-75页 |
| ·小鼠EAE 模型的诱导及评价 | 第72页 |
| ·组织取材和冰冻切片 | 第72-73页 |
| ·双重免疫荧光染色 | 第73-74页 |
| ·BrdU 免疫荧光染色 | 第74页 |
| ·阳性细胞显微分析及计数 | 第74页 |
| ·统计学处理 | 第74-75页 |
| 3 结果 | 第75-78页 |
| ·慢性持续型EAE 小鼠模型的建立及评价 | 第75页 |
| ·慢性持续型EAE 导致NSC/NPC 增殖能力受损 | 第75-78页 |
| 4 讨论 | 第78-82页 |
| 小结 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-106页 |
| 个人简历和研究成果 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
