| 英文缩写词表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一部分 适度低氧对神经干细胞增殖和代谢的影响 | 第13-27页 |
| 一、实验材料 | 第13-14页 |
| 1. 主要仪器 | 第13-14页 |
| 2. 主要试剂 | 第14页 |
| 3. 实验取材 | 第14页 |
| 二、实验方法 | 第14-17页 |
| 1. 神经干细胞分离培养 | 第14-15页 |
| 2. 免疫组化鉴定神经干细胞 | 第15页 |
| 3. NSCs 诱导分化实验 | 第15页 |
| 4. 低氧条件及分组 | 第15页 |
| 5. CCK-8 检测神经干细胞增殖 | 第15页 |
| 6. 生化分析仪测定细胞培养上清中葡萄糖、乳酸、丙酮酸浓度 | 第15-16页 |
| 7. RT-PCR 检测代谢相关酶的表达 | 第16页 |
| 8. 统计学分析 | 第16-17页 |
| 三、实验结果 | 第17-22页 |
| 1. 神经干细胞分离培养 | 第17页 |
| 2. 神经干细胞的鉴定 | 第17-18页 |
| 3. 低氧促进神经干细胞的增殖 | 第18页 |
| 4. 低氧对培养上清中葡萄糖、丙酮酸、乳酸浓度、pH 值的影响 | 第18-20页 |
| 5. 低氧对神经干细胞中代谢相关酶表达的影响 | 第20-21页 |
| 6. 低氧对神经干细胞中ATP 产生的影响 | 第21-22页 |
| 讨论 | 第22-24页 |
| 小结 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-27页 |
| 第二部分 miR-21 的表达及对NSCs 体外增殖的影响 | 第27-44页 |
| 一、实验材料 | 第28-30页 |
| 1. 实验动物 | 第28页 |
| 2. 主要仪器 | 第28页 |
| 3. 主要试剂 | 第28-30页 |
| 二、实验方法 | 第30-34页 |
| 1. 低氧条件与实验分组 | 第30页 |
| 2. 微阵列技术分析ncRNAs 表达谱 | 第30页 |
| 3. Real-Time PCR 检测miR-21 在NSCs 中的表达 | 第30-33页 |
| 4. miR-21 慢病毒载体表达效果检测 | 第33页 |
| 5. 免疫组化检测Brdu 阳性细胞数 | 第33页 |
| 6. 统计分析 | 第33-34页 |
| 三、实验结果 | 第34-41页 |
| 1. NSCs 中表达变化的 ncRNA 的芯片筛选结果 | 第34页 |
| 2. 不同的氧浓度对 NSCs 中 miR-21 表达的影响 | 第34-36页 |
| ·不同的氧浓度对神经干细胞存活的影响 | 第35页 |
| ·不同的氧浓度对神经干细胞中 miR-21 表达的影响 | 第35-36页 |
| 3.m iR-21 过表达病毒载体的检测 | 第36-37页 |
| 4.m iR-21 对NSCs 存活和增殖的影响 | 第37-39页 |
| ·过表达 miR-21 对神经干细胞的存活作用 | 第37-38页 |
| ·过表达 miR-21 对神经干细胞的增殖作用 | 第38-39页 |
| 5. 过表达miR-21 对缺氧时神经干细胞的存活的影响 | 第39-41页 |
| ·过表达 miR-21 对缺氧时神经干细胞存活的影响 | 第39页 |
| ·过表达 miR-21 对缺氧时神经干细胞增殖的影响 | 第39-41页 |
| 讨论 | 第41-43页 |
| 小结 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-45页 |
| 文献综述 | 第45-52页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第52-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
