| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 拟南芥卵形家族蛋白研究概述 | 第12-14页 |
| 1.1.1 卵形家族蛋白研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.2 AtOFP1研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 TALE类转录因子研究背景 | 第14-15页 |
| 1.3 卵形家族蛋白与TALE类转录因子互作分析 | 第15-16页 |
| 1.4 蛋白互作的研究方法 | 第16-20页 |
| 1.4.1 酵母双杂交技术 | 第16-18页 |
| 1.4.2 双分子荧光互补技术 | 第18-20页 |
| 1.5 赤霉素对植物的影响 | 第20页 |
| 1.6 研究目的意义 | 第20-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-40页 |
| 2.1 试验材料 | 第22-26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第22页 |
| 2.1.2 质粒载体及菌种 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试验试剂及药品 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.5 引物序列 | 第24-25页 |
| 2.1.6 主要试剂 | 第25页 |
| 2.1.7 培养基 | 第25-26页 |
| 2.2 试验方法 | 第26-40页 |
| 2.2.1 拟南芥的培养 | 第26页 |
| 2.2.2 knat5纯合突变体筛选 | 第26-29页 |
| 2.2.3 构建HAKNAT5过表达体 | 第29-33页 |
| 2.2.4 酵母双杂交试验 | 第33-36页 |
| 2.2.5 双分子荧光互补试验 | 第36-37页 |
| 2.2.6 qRT-PCR分析特异性表达 | 第37-38页 |
| 2.2.7 GA处理的荧光定量PCR | 第38-39页 |
| 2.2.8 表型观察 | 第39-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-51页 |
| 3.1 拟南芥knat5缺失突变体的筛选及其过表达体构建 | 第40-41页 |
| 3.1.1 knat5 纯合突变体的获得及试验材料的鉴定 | 第40页 |
| 3.1.2 拟南芥 ofp1、knat5 纯合突变体及 HAOFP1 过表达体、HAKNAT5过表达体的鉴定 | 第40-41页 |
| 3.2 .KNAT5基因及OFP1基因的克隆及载体构建 | 第41-42页 |
| 3.2.1 拟南芥RNA质量检测 | 第41页 |
| 3.2.2 酵母双杂交载体的构建 | 第41-42页 |
| 3.3 酵母双杂验证OFP1和KNAT5之间的互作 | 第42-45页 |
| 3.4 双分子荧光互补验证KNAT5和OFP1之间的互作 | 第45-47页 |
| 3.5 拟南芥OFP1和KNAT5基因的表达模式 | 第47-48页 |
| 3.6 OFP1和KNAT5在拟南芥植物生长中的作用 | 第48-49页 |
| 3.6.1 拟南芥侧根数目 | 第48-49页 |
| 3.6.2 拟南芥根长 | 第49页 |
| 3.7 赤霉素作用下OFP1及KNAT5表达情况 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| 4.1 OFP1与TALE类转录因子之间的互作 | 第51页 |
| 4.2 AtOFP1与KNAT5之间的相互作用 | 第51-52页 |
| 4.3 AtOFP1与KNAT5基因的表达模式 | 第52页 |
| 4.4 AtOFP1与KNAT5之间的相互作用调控植株根部生长 | 第52页 |
| 4.5 AtOFP1和KANT5基因表达对外源GA的响应 | 第52-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第64页 |
