| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一部分 绪论 | 第13-28页 |
| 1.1 植物多倍体的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 多倍体的起源 | 第13-14页 |
| 1.1.2 多倍体的遗传特性 | 第14页 |
| 1.1.3 多倍体的形成因素 | 第14-16页 |
| 1.1.4 多倍体的鉴定 | 第16-17页 |
| 1.1.5 水稻多倍体的研究及应用 | 第17页 |
| 1.2 减数分裂机制研究进展 | 第17-26页 |
| 1.2.1 减数分裂过程 | 第18-19页 |
| 1.2.2 植物减数分裂相关研究 | 第19-23页 |
| 1.2.3 MND1基因研究进展 | 第23-25页 |
| 1.2.4 水稻作为减数分裂模式植物的优越性 | 第25-26页 |
| 1.3 本研究的目的及意义 | 第26-28页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第28-41页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第28页 |
| 2.1.2 菌种及质粒 | 第28页 |
| 2.1.3 分子生物学实验相关及其他试剂 | 第28页 |
| 2.1.4 培养基 | 第28-29页 |
| 2.1.5 实验溶液和试剂的配制 | 第29-30页 |
| 2.1.6 主要仪器和设备 | 第30-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-41页 |
| 2.2.1 实验材料的种植 | 第31页 |
| 2.2.2 减数分裂染色体制片 | 第31页 |
| 2.2.3 Southern blot | 第31-34页 |
| 2.2.4 水稻基因组的抽提(CTAB法) | 第34页 |
| 2.2.5 水稻总RNA的提取 | 第34-35页 |
| 2.2.6 cDNA文库的构建 | 第35页 |
| 2.2.7 愈伤组织的诱导 | 第35-36页 |
| 2.2.8 转基因阳性植株的PCR鉴定 | 第36-37页 |
| 2.2.9 荧光定量PCR | 第37页 |
| 2.2.10 水稻花粉发育特性的分析 | 第37-38页 |
| 2.2.11 花药半薄切片制作 | 第38-39页 |
| 2.2.12 相关引物信息 | 第39-41页 |
| 第三部分 结果与分析 | 第41-63页 |
| 3.1 蛋白质结构与功能分析 | 第41-46页 |
| 3.1.1 蛋白质结构预测 | 第41-42页 |
| 3.1.2 启动子预测分析 | 第42-44页 |
| 3.1.3 OsMND1的组织差异性表达分析 | 第44-45页 |
| 3.1.4 OsMND1的亚细胞定位分析 | 第45-46页 |
| 3.2 超表达植株加倍及检测分析 | 第46-55页 |
| 3.2.1 超表达二倍体植株的加倍 | 第46页 |
| 3.2.2 加倍植株的鉴定 | 第46-50页 |
| 3.2.3 农艺性状分析 | 第50-52页 |
| 3.2.4 显微结构分析 | 第52-53页 |
| 3.2.5 减数分裂染色体行为分析 | 第53-55页 |
| 3.3 干扰植株检测鉴定及功能分析 | 第55-61页 |
| 3.3.1 干扰植株检测 | 第55-56页 |
| 3.3.2 农艺性状分析 | 第56-58页 |
| 3.3.3 显微结构观察 | 第58-59页 |
| 3.3.4 减数分裂染色体行为观察 | 第59-61页 |
| 3.4 OSMND1干扰和超量表达对其他基因的影响 | 第61-63页 |
| 第四部分 讨论与展望 | 第63-66页 |
| 4.1 讨论 | 第63-64页 |
| 4.1.1 OsMND1对多倍体水稻减数分裂的调控作用 | 第63-64页 |
| 4.1.2 OsMND1与其他相关基因相互作用研究 | 第64页 |
| 4.2 展望 | 第64-66页 |
| 4.2.1 多倍体水稻减数分裂分子机制研究进一步深入 | 第64-65页 |
| 4.2.2 OsMND1及其相关蛋白相互作用分析 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
