| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-19页 |
| 1.1 骨关节炎和炎症反应 | 第11-13页 |
| 1.1.1 促炎细胞因子和其他炎性介质在骨关节炎中的作用 | 第12页 |
| 1.1.2 软骨细胞产生的MMPs和炎症介质 | 第12-13页 |
| 1.1.3 骨关节炎滑膜中巨噬细胞的功能 | 第13页 |
| 1.1.4 NO与软骨细胞凋亡 | 第13页 |
| 1.2 骨关节炎中先天性免疫系统的激活 | 第13-14页 |
| 1.3 骨关节炎的生物力学与炎症反应 | 第14页 |
| 1.4 骨关节炎的影像学诊断 | 第14-15页 |
| 1.5 鼠骨关节炎模型的研究 | 第15-16页 |
| 1.5.1 衰老模型 | 第15页 |
| 1.5.2 肥胖模型 | 第15页 |
| 1.5.3 手术模型 | 第15-16页 |
| 1.6 骨关节炎的治疗研究进展 | 第16-18页 |
| 1.6.1 非药物治疗 | 第16-17页 |
| 1.6.2 手术治疗 | 第17页 |
| 1.6.3 药物治疗 | 第17-18页 |
| 1.6.4 L-茶氨酸 | 第18页 |
| 1.7 目的与意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-30页 |
| 2.1 试验材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 试验试剂及药品 | 第19-21页 |
| 2.1.3 试验设备 | 第21页 |
| 2.2 试验设计 | 第21-22页 |
| 2.2.1 在体试验设计 | 第21-22页 |
| 2.2.2 离体试验设计 | 第22页 |
| 2.2.3 临床应用试验 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-29页 |
| 2.3.1 大鼠造模及样本处理 | 第22-23页 |
| 2.3.2 病理组织学检查 | 第23-24页 |
| 2.3.3 蛋白浓度测定与试验指标测定 | 第24-25页 |
| 2.3.4 软骨细胞的分离与培养 | 第25页 |
| 2.3.5 软骨细胞的鉴定 | 第25-26页 |
| 2.3.6 L-茶氨酸对软骨细胞的毒性以及试验浓度的确定 | 第26页 |
| 2.3.7 软骨细胞蛋白的提取和Western Blot | 第26-27页 |
| 2.3.8 软骨细胞RNA的提取及q-PCR | 第27-29页 |
| 2.4 数据统计和分析 | 第29-30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-39页 |
| 3.1 在体试验结果 | 第30-33页 |
| 3.1.1 软骨表面眼观变化 | 第30页 |
| 3.1.2 软骨膜和软骨细胞数目及排列的变化 | 第30-31页 |
| 3.1.3 细胞外基质中蛋白多糖含量的变化 | 第31-32页 |
| 3.1.4 血清中COX-2、PGE-2含量的变化 | 第32页 |
| 3.1.5 软骨组织中NO、iNOS含量的变化 | 第32-33页 |
| 3.2 离体试验结果 | 第33-38页 |
| 3.2.1 正常软骨细胞各阶段的生长情况 | 第33-34页 |
| 3.2.2 软骨细胞的鉴定 | 第34-35页 |
| 3.2.3 CCK-8试验检测L-Theanine对软骨细胞活力的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.4 L-Theanine对基质金属蛋白酶(MMP-3、MMP-13)的影响 | 第36页 |
| 3.2.5 L-Theanine对COX-2、PGE-2的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.6 L-Theanine对NO、iNOS的影响 | 第37-38页 |
| 3.3 临床应用试验结果 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 4.1 L-Theanine对iNOS、NO含量的影响 | 第39页 |
| 4.2 L-Theanine对COX-2、PGE-2表达的影响 | 第39-40页 |
| 4.3 L-Theanine对基质金属蛋白酶的影响 | 第40页 |
| 4.4 骨关节炎动物模型对研究的影响 | 第40-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第51页 |
