| 摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 1 文献综述 | 第17-33页 |
| 1.1 抗生素概述 | 第17-18页 |
| 1.1.1 食品中抗生素的危害 | 第17页 |
| 1.1.2 食品中抗生素残留研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2 核酸适配体概述 | 第18-20页 |
| 1.2.1 适配体的定义和筛选 | 第18页 |
| 1.2.2 适配体的特点和优势 | 第18-19页 |
| 1.2.3 抗生素核酸适配体用于检测的机制 | 第19页 |
| 1.2.4 基于核酸适配体传感器的分类 | 第19-20页 |
| 1.3 比色适配体传感器 | 第20-25页 |
| 1.3.1 比色适配体传感器的检测机理 | 第20-21页 |
| 1.3.2 基于胶体金的比色适配体传感器 | 第21-22页 |
| 1.3.3 酶催化比色适配体传感器 | 第22-23页 |
| 1.3.4 无酶催化比色适配体传感器 | 第23-25页 |
| 1.4 比色适配体传感器的信号放大策略及应用 | 第25-30页 |
| 1.4.1 基于纳米材料的信号放大策略 | 第25-26页 |
| 1.4.2 基于金属有机框架(MOF)的信号放大策略 | 第26-27页 |
| 1.4.3 基于蛋白质酶的信号放大策略 | 第27-28页 |
| 1.4.4 基于DNA链的信号放大策略 | 第28-30页 |
| 1.5 本文基本思路及创新点 | 第30-33页 |
| 2 基于磁性单链DNA结合蛋白标记复合探针的比色适配体方法检测食品中氯霉素 | 第33-50页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 实验部分 | 第34-37页 |
| 2.2.1 试剂和化学品 | 第34-35页 |
| 2.2.2 仪器 | 第35页 |
| 2.2.3 磁性探针的制备 | 第35-36页 |
| 2.2.4 适配体和HRP共固定检测探针(Apt-SiO_2@Au-HRP)的制备 | 第36页 |
| 2.2.5 用于CAP检测的比色适体传感器的制备 | 第36-37页 |
| 2.2.6 牛奶样品中CAP的检测 | 第37页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第37-49页 |
| 2.3.1 Au纳米颗粒、Fe_3O_4NPs、AuMNPs、AuMNPs-SSB的表征 | 第37-39页 |
| 2.3.2 AuNPs,SiO_2NPs,SiO_2@AuNPs,Apt-SiO_2@Au-HRP的表征 | 第39-40页 |
| 2.3.3 比色方法检测CAP的可行性和信号放大验证 | 第40-41页 |
| 2.3.4 实验条件的优化 | 第41-43页 |
| 2.3.5 小分子的检测 | 第43-48页 |
| 2.3.6 真实牛奶样品中的CAP的测定 | 第48-49页 |
| 2.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 3 基于多孔硅-酶联聚合物适配体探针和核酸外切酶辅助目标物循环进行信号放大的POCT比色适配体传感器来检测链霉素 | 第50-69页 |
| 3.1 引言 | 第50-51页 |
| 3.2 实验部分 | 第51-54页 |
| 3.2.1 化学试剂 | 第51-52页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第52页 |
| 3.2.3 探针的制备过程 | 第52-53页 |
| 3.2.4 开发方法的可行性验证过程 | 第53页 |
| 3.2.5 牛奶中STR的检测 | 第53-54页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第54-67页 |
| 3.3.1 探针的表征 | 第54-58页 |
| 3.3.2 比色适配体传感器的可行性和响应原理 | 第58-59页 |
| 3.3.3 比色适配体传感器的信号放大性能 | 第59-61页 |
| 3.3.4 实验条件的优化 | 第61-63页 |
| 3.3.5 比色适配体传感器的分析性能 | 第63-64页 |
| 3.3.6 ExoI的剪切性能 | 第64-65页 |
| 3.3.7 比色适配体传感器的重现性,稳定性,选择性和特异性 | 第65-67页 |
| 3.3.8 实际样品检测 | 第67页 |
| 3.4 本章小结 | 第67-69页 |
| 4 基于模拟酶结合Loop-DNA探针和CHA辅助目标物循环进行信号放大的比色适配体传感器来检测牛奶中的抗生素残留 | 第69-88页 |
| 4.1 引言 | 第69-71页 |
| 4.2 实验部分 | 第71-74页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第71-72页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第72页 |
| 4.2.3 NMOF-Pt的合成 | 第72页 |
| 4.2.4 捕获DNA探针的合成 | 第72-73页 |
| 4.2.5 信号DNA探针的合成 | 第73页 |
| 4.2.6 m-L-DNA探针的制备 | 第73页 |
| 4.2.7 KANA的分析过程 | 第73页 |
| 4.2.8 实际样品的检测过程 | 第73-74页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第74-87页 |
| 4.3.1 捕获DNA探针和信号DNA探针的表征 | 第74-78页 |
| 4.3.2 L-DNA的验证 | 第78-80页 |
| 4.3.3 NMOF-Pt和m-L-DNA探针的信号放大性能 | 第80-81页 |
| 4.3.4 实验条件的优化 | 第81-83页 |
| 4.3.5 分析性能 | 第83-84页 |
| 4.3.6 适配体传感器的特异性,重现性,稳定性和实用性性能 | 第84-87页 |
| 4.4 本章小结 | 第87-88页 |
| 5 基于DNAzyme标记Fe-MIL-88-Pt为新型过氧化物酶标签和目标物触发CSDP循环多重信号放大的比色适配体传感器来检测抗生素 | 第88-106页 |
| 5.1 引言 | 第88-90页 |
| 5.2 实验部分 | 第90-93页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第90-91页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第91页 |
| 5.2.3 捕获探针(MB-cDNA)的合成 | 第91-92页 |
| 5.2.4 信号探针(MIL-88-Pt-DNAzyme)的合成 | 第92-93页 |
| 5.2.5 复合探针的合成 | 第93页 |
| 5.2.6 检测CAP的过程 | 第93页 |
| 5.2.7 实际样品检测 | 第93页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第93-105页 |
| 5.3.1 捕获探针和信号探针的表征 | 第93-98页 |
| 5.3.2 CSDP产物的验证 | 第98页 |
| 5.3.3 MIL-88-Pt-DNAzyme和CSDP的信号放大性能 | 第98-99页 |
| 5.3.4 适配体传感器的实验条件优化 | 第99-101页 |
| 5.3.5 分析性能 | 第101-103页 |
| 5.3.6 适配体传感器的选择性、重现性、稳定性和实用性研究 | 第103-105页 |
| 5.4 本章小结 | 第105-106页 |
| 6 全文总结 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-122页 |
| 在学研究成果 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
