| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 前言 | 第16-21页 |
| 研究现状、成果 | 第16-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-21页 |
| 一、MicroRNA-21在ox-LDL诱导的HUVECs凋亡中的作用及机制的研究 | 第21-65页 |
| 1.1 材料和方法 | 第21-38页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第23-38页 |
| 1.2 结果 | 第38-51页 |
| 1.2.1 正常培养的人脐静脉内皮细胞 | 第38-39页 |
| 1.2.2 细胞凋亡模型的建立 | 第39-40页 |
| 1.2.3 流式细胞仪检测转染后HUVECs各组细胞凋亡率 | 第40-43页 |
| 1.2.4 荧光素酶报告基因检测miRNA-21与PDCD4的靶定关系 | 第43页 |
| 1.2.5 Westernblot法检测转染后PDCD4,bcl-2,Caspase3,Bax,ERK,p-ERK,NF-kBp65,p-NF-kBp65蛋白表达水平结果。 | 第43-49页 |
| 1.2.6 RT-PCR检测转染后miRNA-21表达水平和PDCD4mRNA的表达水平.. | 第49-51页 |
| 1.3 讨论 | 第51-64页 |
| 1.3.1 动脉粥样硬化与内皮细胞凋亡 | 第51-54页 |
| 1.3.2 内皮细胞凋亡中的细胞信号通路 | 第54-56页 |
| 1.3.3 miRNA-21在动脉粥样硬化中的研究进展 | 第56-64页 |
| 1.4 小结 | 第64-65页 |
| 二、波生坦对MicroRNA-21及靶基因表达的影响 | 第65-79页 |
| 2.1 材料和方法 | 第65-66页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第65页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第65-66页 |
| 2.2 结果 | 第66-72页 |
| 2.2.1 波生坦对ox-LDL诱导的HUVECs凋亡率的影响 | 第66-67页 |
| 2.2.2 波生坦对ox-LDL诱导的HUVECs中miRNA-21表达水平和PDCD4mRNA的表达水平的影响 | 第67-68页 |
| 2.2.3 波生坦对ox-LDL诱导的HUVECs中PDCD4,bcl-2,Caspase3,Bax,ERK,p-ERK,NF-kBp65,p-NF-kBp65蛋白表达水平的影响 | 第68-72页 |
| 2.3 讨论 | 第72-78页 |
| 2.3.1 内皮素与心血管疾病 | 第72-73页 |
| 2.3.2 波生坦的临床应用 | 第73-74页 |
| 2.3.3 PDCD4与细胞凋亡 | 第74-77页 |
| 2.3.4 动脉粥样硬化与NF-κB | 第77-78页 |
| 2.4 小结 | 第78-79页 |
| 三、波生坦对apoE-/-小鼠动脉粥样硬化的影响 | 第79-97页 |
| 3.1 对象和方法 | 第79-85页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第79-80页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第80-85页 |
| 3.2 结果 | 第85-90页 |
| 3.2.1 确定造模成果 | 第85页 |
| 3.2.2 体重及血脂指标 | 第85-86页 |
| 3.2.3 组织学变化 | 第86-89页 |
| 3.2.4 各组动脉组织中RAN的表达水平 | 第89-90页 |
| 3.3 讨论 | 第90-96页 |
| 3.3.1 ApoE基因敲除小鼠与动脉粥样硬化 | 第91-94页 |
| 3.3.2 miR-21在动脉粥样硬化研究进展 | 第94-95页 |
| 3.3.3 药物调控miRNA的研究 | 第95-96页 |
| 3.4 小结 | 第96-97页 |
| 全文结论 | 第97-99页 |
| 论文创新点 | 第99页 |
| 论文局限性 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-113页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第113-114页 |
| 综述 MicroRNA-21在动脉粥样硬化疾病中的研究进展 | 第114-132页 |
| 综述参考文献 | 第125-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 个人简历 | 第133页 |
