| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 常用缩写词中英文对照表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 第一部分 不同浓度血管紧张素Ⅱ诱导骨髓间充质干细胞向心肌细胞的定向分化的影响 | 第18-35页 |
| 1 材料与方法 | 第18-25页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第18-19页 |
| 1.3 实验器材 | 第19页 |
| 1.4 BMSCs 体外分离及培养 | 第19-20页 |
| 1.5 BMSCS特征性表型鉴定 | 第20页 |
| 1.6 免疫荧光检测骨髓间充质干细胞诱导后的特异蛋白表达 | 第20-21页 |
| 1.7 检测大鼠骨髓间充质干细胞体外诱导后抑制率 | 第21-22页 |
| 1.8 PCR鉴定相关蛋白MRNA表达 | 第22-25页 |
| 2 结果 | 第25-31页 |
| 2.1 细胞形态学变化 | 第25-27页 |
| 2.2 BMSCS特征性表型鉴定 | 第27页 |
| 2.3 免疫荧光检测骨髓间充质干细胞诱导后的特异蛋白的表达 | 第27-29页 |
| 2.4 大鼠骨髓间充质干细胞诱导后增殖能力及抑制率 | 第29-30页 |
| 2.5 PCR鉴定相关蛋白MRNA表达 | 第30-31页 |
| 3 讨论 | 第31-34页 |
| 4 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分：基于BMSCS/EPCS体外构建具有血管化网络的组织工程化心肌 | 第35-61页 |
| 1 材料与方法 | 第35-43页 |
| 1.1 实验动物 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第35-36页 |
| 1.3 EPCS体外分离及培养 | 第36-37页 |
| 1.4 大鼠EPCS表面标记的检测 | 第37页 |
| 1.5 新型脱细胞牛心包生物支架材料的制备 | 第37-38页 |
| 1.6 对处理后的脱细胞牛心包进行消毒 | 第38页 |
| 1.7 对脱细胞牛心包组织学观察 | 第38-39页 |
| 1.8 大鼠BMSCS/EPCS联合培养复合脱细胞牛心包支架材料体外构建组织工程化心肌的实验研究 | 第39页 |
| 1.9 观察各组细胞在支架上的生长情况 | 第39页 |
| 1.10 大鼠BMSCS/EPCS联合培养复合京尼平交联的脱细胞牛心包支架材料异位构建血管网络化组织工程化心肌的实验研究 | 第39-41页 |
| 1.11 对构建最佳比例血管网络化组织工程化心肌的研究检测 | 第41-43页 |
| 2 结果 | 第43-56页 |
| 2.1 形态学变化 | 第43-44页 |
| 2.2 免疫荧光染色鉴定EPCS相关蛋白的表达 | 第44-45页 |
| 2.3 牛心包脱细胞的处理过程及形态学变化 | 第45-48页 |
| 2.4 大鼠BMSCS/EPCS联合培养复合脱细胞牛心包支架材料体外构建组织工程化心肌的实验观察 | 第48-50页 |
| 2.5 大鼠BMSCS/EPCS联合培养复合京尼平交联的脱细胞牛心包支架材料异位构建血管网络化组织工程化心肌的实验研究 | 第50-54页 |
| 2.6 对构建最佳比例血管网络化组织工程化心肌的研究检测 | 第54-56页 |
| 3 讨论 | 第56-60页 |
| 4 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 综述 | 第67-78页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 在学期间承担/参与的科研课题与研究成果 | 第79-80页 |
| 个人简历 | 第80页 |
