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传染性法氏囊病病毒结构蛋白VP2和VP3调控细胞自噬的分子机制研究

创新点第12-13页
摘要第13-15页
Abstract第15-16页
技术路线第17-18页
第一部分 文献综述第18-33页
    第一章 传染性法氏囊病病毒的研究进展第18-21页
        1 IBDV 简介第18页
        2 IBDV 的基因组结构第18页
        3 IBDV 各蛋白功能第18-21页
    第二章 自噬的研究进展第21-33页
        1 细胞自噬第21页
        2 细胞自噬的分子机制第21-23页
            2.1 诱导第22页
            2.2 自噬泡的成核和生长第22-23页
            2.3 Atg9 膜系统的循环第23页
            2.4 自噬泡与溶酶体或液泡的融合,内含物的释放和降解第23页
        3 自噬与细胞信号途径第23-25页
            3.1 营养信号第24页
            3.2 胰岛素/生长因子信号途径第24页
            3.3 能量感应第24-25页
            3.4 压力反应第25页
        4. 自噬与病毒第25-33页
            4.1 自噬与免疫第25-27页
                4.1.1 自噬在先天免疫中的作用第25-26页
                    4.1.1.1 直接降解胞内的病毒第25-26页
                    4.1.1.2 促进模式识别分子的识别第26页
                    4.1.1.3 调节炎症反应第26页
                4.1.2 自噬在获得性免疫中的作用第26-27页
            4.2 自噬利于病毒的复制第27-28页
            4.3 病毒对自噬的影响第28-30页
                4.3.1 抑制自噬泡的形成第28页
                4.3.2 阻止自噬泡的成熟第28-30页
            4.4 病毒受体与自噬第30-33页
第二部分 研究内容第33-110页
    第一章 IBDV 对宿主细胞自噬的影响第33-53页
        1. 材料方法第35-39页
            1.1 病毒与细胞第35页
            1.2 试剂和抗体第35页
            1.3 蛋白样品收集第35页
            1.4 蛋白浓度的测定第35-36页
            1.5 免疫共沉淀第36页
            1.6 透射电镜第36-37页
            1.7 免疫荧光第37页
            1.8 GFP-LC3 标记自噬体的检测第37-38页
            1.9 SDS-PAGE 及 Western-blot第38页
            1.10 IBDV 病毒的氯化铯密度梯度离心纯化第38-39页
            1.11 绿色荧光真核表达载体 peGFP-LC3 载体的构建第39页
                1.11.1 引物设计与合成第39页
                1.11.2 LC3 基因的扩增和克隆第39页
        2. 实验结果第39-51页
            2.1 IBDV 感染对内源性 LC3 以及 P62 的影响第39-41页
            2.2 纯化病毒对 DF-1 细胞内源性 LC3 的影响第41-42页
            2.3 IBDV 感染对 GFP-LC3 的影响第42-46页
            2.4 自噬对病毒的影响第46-51页
                2.4.1 自噬泡对病毒的包裹第46-47页
                2.4.2 自噬泡对病毒蛋白的包裹第47-48页
                2.4.3 抑制自噬和增强自噬对病毒复制的影响第48-51页
        3. 讨论第51-53页
    第二章 Hsp90 识别 IBDV 并促进细胞自噬第53-74页
        1. 材料方法第54-55页
            1.1 western blot第54页
            1.2 蛋白原核表达第54-55页
                1.2.1 大肠杆菌的诱导表达第54页
                1.2.2 大肠杆菌的裂解第54-55页
            1.3 真核表达载体 Myc-Hsp90 和 Flag-AKT 载体的构建第55页
                1.3.1 引物设计与合成第55页
                1.3.2 Hsp90 基因的扩增和克隆第55页
        2.实验结果第55-71页
            2.1 IBDV 在感染前期抑制宿主细胞中 AKT 和 mTOR 的磷酸化第55-57页
            2.2 IBDV 在感染早期对自噬的激活依赖于 mTOR 通路第57-58页
            2.3 IBDV VP2 蛋白可以诱导细胞自噬的发生第58-61页
            2.4 IBDV 通过细胞表面受体 Hsp90 抑制 AKT/mTOR 活性,并因此来激活自 噬第61-71页
                2.4.1 VP2 能够与 Hsp90 互作第62-63页
                2.4.2 IBDV 感染与 VP2 孵育能够导致 AKT 和 Hsp90 互作的变弱第63-64页
                2.4.3 VP2 与细胞 Hsp90 的互作对于自噬的诱导是必须的第64-65页
                2.3.4 IBDV/VP2 对 AKT/mTOR 通路的影响始于细胞膜处第65页
                2.4.5 Hsp90 抗体能够促进细胞自噬第65-67页
                2.4.6 Hsp90 抗体能够抑制 AKT/mTOR 信号通路的活性第67页
                2.4.7 Hsp90,AKT,mTOR 对于 IBDV 感染和 VP2 孵育所激活的自噬是必需的第67-71页
            2.5 IBDV 入侵细胞激活自噬模式图第71页
        3.讨论第71-74页
            3.1 IBDV 和病原受体第71-72页
            3.2 mTOR 和模式识别分子的检测第72-74页
    第三章 IBDV VP3 抑制细胞自噬第74-110页
        1.材料与方法第75-77页
            1.1 病毒与细胞第75页
            1.2 试剂和抗体第75-76页
            1.3 蛋白样品收集第76页
            1.4 蛋白浓度的测定第76页
            1.5 免疫共沉淀第76页
            1.6 真核表达载体 Myc-Hsp90 和 Flag-AKT 载体的构建第76-77页
                1.6.1 引物设计与合成第76页
                1.6.2 基因的扩增和克隆第76-77页
        2.实验结果第77-107页
            2.1 IBDV VP3 结构域缺失突变体的构建第77-79页
            2.2 IBDV 各病毒蛋白对 GFP-LC3 的影响第79-83页
                2.2.1 IBDV 各病毒基因和 GFP-LC3 双表达质粒构建第79页
                2.2.2 各病毒基因表达后对宿主细胞 GFP-LC3 的影响第79-80页
                2.2.3 各病毒基因对 GFP-LC3 荧光强度的影响第80-81页
                2.2.4 共转各病毒基因和 GFP-LC3 后对 GFP 荧光强度的影响第81页
                2.2.5 VP3 或 VP5 影响各病毒基因对 GFP-LC3 荧光的影响第81-82页
                2.2.6 western 验证 VP3 影响其他各病毒基因对内源性 LC3 和 P62 的影响65第82-83页
            2.3 IBDV 各病毒基因表达对 293T 细胞中内源性 LC3 及 P62 的影响第83-84页
            2.4 VP3 对 DF-1 细胞自噬泡的影响第84-85页
            2.5 VP3 能够与 DF-1 细胞的 Beclin-1 发生互作第85-87页
            2.6 IBDV 感染的鸡法氏囊组织中,IBDV VP3 能够与内源性的 Beclin-1 发生互 作第87-88页
            2.7 IBDV 感染的 293T 细胞中,IBDV VP3 能够与内源性的 Beclin-1 发生互作第88-89页
            2.8 VP3 CC 结构域缺失突变体与 Beclin-1 互作的分析第89-91页
            2.9 IBDV VP3CC 结构域缺失对自噬的影响第91页
            2.10 IBDV 感染对 Beclin-1-VPS34 复合体的影响第91-92页
            2.11 VP3 对 Beclin-1 与 ATG14 互作的影响第92-94页
            2.12 IBDV 感染对 hBeclin-1-VPS34 复合体的破坏导致 PI3P 形成的减少第94页
            2.13 VP3 诱导 VPS34-AKT-PDK1 复合体的形成第94-97页
                2.13.1 VP3 促进 VPS34 和 PDK1 以及 AKT 的互作第95-96页
                2.13.2 VP3 促进 AKT 和 PDK1 以及 VPS34 的互作第96-97页
            2.14 VP3 无法促进 hBeclin-1 和 AKT 以及 PDK1 的互作第97-98页
            2.15 VP3 促进 AKT 和 mTOR 的磷酸化第98-99页
            2.16 VP3 促进 AKT 的磷酸化依赖于 VPS3482第99-100页
            2.17 PDK1 抑制剂能够逆反由 VP3 抑制的自噬第100-101页
            2.18 PDK1 抑制剂不能逆反 VP3 对 VPS34 复合体的破坏第101-102页
            2.19 VP3 能够诱导 VPS34 和 AKT 定位第102-103页
            2.20 VP3 能够诱导 VPS34 和 PDK1 的共定位第103-104页
            2.21 VP3 能够诱导内质网(ER)和 AKT 定位第104-105页
            2.22 VP3 能够诱导内质网(ER)和 PDK1 定位第105-106页
            2.23 对 VPS34 和 ER 共定位的验证第106-107页
            2.24 VP3 抑制自噬模式图第107页
        3. 讨论第107-110页
全文总结第110-113页
展望第113-117页
参考文献第117-126页
第三部分 附录第126页
附录 A 缩略词第126-128页
附录 B 常用缓冲液及培养基配方第128-133页
致谢第133页

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