摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
前言 | 第14-33页 |
1 微生物多糖研究概况 | 第14-22页 |
1.1 微生物多糖分类 | 第15页 |
1.2 微生物多糖的构效关系研究 | 第15-19页 |
1.2.1 多糖结构与免疫活性关系 | 第16-17页 |
1.2.2 多糖结构与抗病毒活性关系 | 第17页 |
1.2.3 多糖结构与抗凝血活性关系 | 第17-18页 |
1.2.4 多糖结构与降血糖活性关系 | 第18-19页 |
1.3 多糖的结构修饰方法 | 第19-22页 |
1.3.1 物理修饰法 | 第19-20页 |
1.3.2 化学修饰法 | 第20-22页 |
1.3.3 生物修饰法 | 第22页 |
2 海洋微生物胞外多糖研究进展 | 第22-28页 |
2.1 海洋微生物多样性 | 第23-25页 |
2.2 海洋微生物胞外多糖研究进展 | 第25-27页 |
2.2.1 海洋细菌来源胞外多糖 | 第25-26页 |
2.2.2 海洋放线菌来源胞外多糖 | 第26页 |
2.2.3 海洋真菌来源胞外多糖 | 第26-27页 |
2.3 海洋微生物胞外多糖的应用前景 | 第27-28页 |
3 多糖结构研究方法 | 第28-33页 |
3.1 酸水解 | 第28-29页 |
3.2 乙酰解 | 第29页 |
3.3 甲基化分析 | 第29页 |
3.4 HPLC 法 | 第29-30页 |
3.5 MS 法 | 第30-31页 |
3.6 NMR 法 | 第31-33页 |
第一章 红树林根泥来源放线菌 Saccharopolyspora sp.胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第33-56页 |
1 引言 | 第33页 |
2 材料与仪器 | 第33-34页 |
2.1 实验原料 | 第33页 |
2.2 实验材料及试剂 | 第33-34页 |
2.3 实验仪器 | 第34页 |
3 实验方法 | 第34-41页 |
3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第34-35页 |
3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第35页 |
3.2.1 离子交换色谱法 | 第35页 |
3.2.2 凝胶渗透色谱法 | 第35页 |
3.3 纯度分析及分子量测定 | 第35-36页 |
3.4 单糖组成分析 | 第36页 |
3.4.1 完全酸水解 | 第36页 |
3.4.2 PMP 柱前衍生 | 第36页 |
3.4.3 HPLC 分析 | 第36页 |
3.5 理化性质分析 | 第36-38页 |
3.5.1 总糖含量测定 | 第36-37页 |
3.5.2 蛋白含量测定 | 第37页 |
3.5.3 氨基糖含量测定 | 第37-38页 |
3.6 红外光谱分析 | 第38页 |
3.7 甲基化分析 | 第38-40页 |
3.7.1 试剂及样品预处理 | 第38-39页 |
3.7.2 甲基化反应 | 第39页 |
3.7.3 完全酸水解 | 第39页 |
3.7.4 还原及全乙酰化反应 | 第39页 |
3.7.5 GC-MS 分析 | 第39-40页 |
3.8 部分酸水解 | 第40页 |
3.9 乙酰解反应 | 第40页 |
3.10 核磁共振波谱分析 | 第40-41页 |
3.11 DPPH 自由基清除活性评价 | 第41页 |
3.11.1 实验原理 | 第41页 |
3.11.2 实验方法 | 第41页 |
4 实验结果与讨论 | 第41-54页 |
4.1 胞外多糖的分离纯化 | 第41-43页 |
4.2 纯度分析及分子量测定 | 第43-44页 |
4.3 单糖组成及成分分析 | 第44-45页 |
4.4 红外光谱分析 | 第45-46页 |
4.5 甲基化分析 | 第46-50页 |
4.6 核磁共振波谱分析 | 第50-54页 |
4.7 DPPH 自由基清除活性评价 | 第54页 |
5 小结 | 第54-56页 |
第二章 胶州湾海泥来源放线菌 Streptomyces sp.胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第56-69页 |
1 引言 | 第56页 |
2 材料与仪器 | 第56-57页 |
2.1 实验原料 | 第56页 |
2.2 实验材料及试剂 | 第56-57页 |
2.3 实验仪器 | 第57页 |
3 实验方法 | 第57-58页 |
3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第57页 |
3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第57页 |
3.3 理化性质分析 | 第57页 |
3.4 纯度分析及分子量测定 | 第57页 |
3.5 单糖组成分析 | 第57页 |
3.6 红外光谱分析 | 第57页 |
3.7 甲基化分析 | 第57-58页 |
3.8 部分酸水解 | 第58页 |
3.9 核磁共振波谱分析 | 第58页 |
3.10 DPPH 自由基清除活性评价 | 第58页 |
4 实验结果与讨论 | 第58-68页 |
4.1 胞外多糖的分离纯化 | 第58-59页 |
4.2 纯度分析及分子量测定 | 第59-60页 |
4.3 单糖组成分析 | 第60-61页 |
4.4 红外光谱分析 | 第61-62页 |
4.5 甲基化分析 | 第62-63页 |
4.6 核磁共振波谱解析 | 第63-67页 |
4.7 DPPH 自由基清除活性评价 | 第67-68页 |
5 小结 | 第68-69页 |
第三章 海绵来源真菌 Apiospora montagnei 胞外多糖的分离纯化及结构研究 | 第69-85页 |
1 引言 | 第69页 |
2 材料与仪器 | 第69-70页 |
2.1 实验原料 | 第69页 |
2.2 实验材料及试剂 | 第69-70页 |
2.3 实验仪器 | 第70页 |
3 实验方法 | 第70-71页 |
3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第70页 |
3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第70页 |
3.3 纯度分析及分子量测定 | 第70页 |
3.4 单糖组成分析 | 第70页 |
3.5 理化性质分析 | 第70页 |
3.6 红外光谱分析 | 第70-71页 |
3.7 甲基化分析 | 第71页 |
3.8 部分酸水解 | 第71页 |
3.8.1 多糖部分酸水解及纯化 | 第71页 |
3.8.2 TLC 分析 | 第71页 |
3.9 核磁共振波谱分析 | 第71页 |
4 实验结果与讨论 | 第71-84页 |
4.1 胞外多糖的分离纯化 | 第71-73页 |
4.2 分子量测定 | 第73-74页 |
4.3 单糖组成分析 | 第74-75页 |
4.4 理化性质测定 | 第75-76页 |
4.5 红外光谱分析 | 第76-78页 |
4.6 甲基化分析 | 第78-80页 |
4.7 NMR 波谱分析 | 第80-84页 |
5 小结 | 第84-85页 |
第四章 海绵共附生真菌 MXH-82 和红树林真菌 Aspergillus flavus 胞外多糖的研究 | 第85-94页 |
1 引言 | 第85页 |
2 材料与仪器 | 第85-86页 |
2.1 实验原料 | 第85页 |
2.2 实验材料及试剂 | 第85页 |
2.3 实验仪器 | 第85-86页 |
3 实验方法 | 第86-87页 |
3.1 胞外多糖粗品的提取 | 第86页 |
3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第86页 |
3.3 纯度分析及分子量测定 | 第86页 |
3.4 单糖组成分析 | 第86页 |
3.5 理化性质分析 | 第86-87页 |
4 实验结果及讨论 | 第87-93页 |
4.1 胞外多糖的提取及分离纯化 | 第87-90页 |
4.1.1 阴离子交换色谱法 | 第87-88页 |
4.1.2 凝胶渗透色谱法 | 第88-90页 |
4.2 分子量测定 | 第90-91页 |
4.3 单糖组成及成分分析 | 第91-93页 |
5 小结 | 第93-94页 |
参考文献 | 第94-101页 |
结语 | 第101-103页 |
致谢 | 第103-104页 |
个人简历 | 第104页 |
发表的学术论文 | 第104-105页 |