| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一部分 XCR1在口腔鳞状细胞癌与唾液腺腺样囊性癌中的表达以及与病理参数之间的关系 | 第13页 |
| 1 前言 | 第13-14页 |
| 2 材料和方法 | 第14-17页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第14页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第14页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第14页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第14页 |
| 2.3 实验方法 | 第14-15页 |
| 2.4 实验结果评估方法 | 第15页 |
| 2.5 统计分析 | 第15-17页 |
| 3 结果 | 第17-20页 |
| 3.1 XCR1在口腔鳞状细胞癌中表达,在癌旁组织中表低表达 | 第17页 |
| 3.2 XCR1在腺样囊性癌中表达,在健康腮腺组织中表低表达 | 第17-18页 |
| 3.3 XCR1与口腔鳞状细胞癌临床各病理参数相关 | 第18-19页 |
| 3.4 XCR1与唾液腺腺样囊性癌临床各病理参数相关 | 第19-20页 |
| 4 讨论 | 第20-22页 |
| 5 结论 | 第22-23页 |
| 第二部分 XCR1在SACC-83细胞中的表达以及生物学行为 | 第23页 |
| 1 前言 | 第23-25页 |
| 2 材料 | 第25-27页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第25-27页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第25页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第25页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第25-27页 |
| 3 实验方法 | 第27-33页 |
| 3.1 细胞培养 | 第27页 |
| 3.1.1 细胞复苏 | 第27页 |
| 3.1.2 细胞换液 | 第27页 |
| 3.1.3 细胞消化及传代 | 第27页 |
| 3.1.4 细胞冻存 | 第27页 |
| 3.2 细胞转染 | 第27-28页 |
| 3.3 RT-PCR检测XCR1在SACC-83细胞中的表达及siRNA的敲减效率 | 第28-30页 |
| 3.3.1 总RNA的提去提取 | 第28页 |
| 3.3.2 反转录cDNA | 第28-29页 |
| 3.3.3 实时荧光定量检测 | 第29-30页 |
| 3.4 CCK-8检测细胞增殖 | 第30-31页 |
| 3.4.1 96 孔板转染 | 第30页 |
| 3.4.2 CCK-8检测细胞增殖 | 第30-31页 |
| 3.5 划痕实验 | 第31页 |
| 3.6 无Matrigel胶包被的transwell侵袭小室实验 | 第31-32页 |
| 3.6.1 24 孔板转染 | 第31页 |
| 3.6.2 无Matrigel胶包被的小室实验 | 第31-32页 |
| 3.7 Matrigel胶包被的transwell小室实验 | 第32页 |
| 3.8 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第32-33页 |
| 4 结果 | 第33-38页 |
| 4.1 RT-PCR结果表明siRNA转染后XCR1表达明显下降 | 第33-34页 |
| 4.1.1 RNA 浓度符合 RT-PCR 实验所需条件 | 第33-34页 |
| 4.2 敲低XCR1后细胞增殖能力下降 | 第34页 |
| 4.3 敲低XCR1后细胞迁移能力下降 | 第34-35页 |
| 4.4 无Matrigel胶包被的transwell小室实验同样验证了XCR1敲低后SACC-83细胞迁移能力下降 | 第35-36页 |
| 4.5 敲低XCR1后可以明显抑制SACC-83细胞的侵袭能力 | 第36-37页 |
| 4.6 降低XCR1表达后SACC-83细胞的细胞凋亡率显著增高 | 第37-38页 |
| 5 讨论 | 第38-39页 |
| 6 结论 | 第39-40页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 综述 | 第44-55页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 个人简历 | 第56页 |
