| 英汉缩略语名词对照 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-15页 |
| 1 实验仪器与耗材 | 第12-13页 |
| 1.1 实验仪器 | 第12页 |
| 1.2 主要试剂耗材 | 第12-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-15页 |
| 2.1 伦理许可 | 第13页 |
| 2.2 实验动物造模 | 第13-15页 |
| 2.2.1 实验动物分组 | 第13页 |
| 2.2.2 实验动物造模 | 第13-14页 |
| 2.2.3 实验动物成模后检测 | 第14-15页 |
| 第一部分 VIP 及其受体在不同程度慢性酒精中毒大鼠内耳的表达差异 | 第15-26页 |
| 1 实验方法 | 第15-19页 |
| 1.1 内耳标本的制备 | 第15页 |
| 1.2 实时荧光定量 PCR | 第15-17页 |
| 1.2.1 Total RNA 的提取 | 第15-16页 |
| 1.2.2 反转录的合成 | 第16页 |
| 1.2.3 PCR 反应 | 第16-17页 |
| 1.3 Western blotting | 第17-18页 |
| 1.3.1 蛋白抽提 | 第17页 |
| 1.3.2 Western blotting 检测 | 第17-18页 |
| 1.4 免疫组织化学 | 第18-19页 |
| 1.4.1 实验方法 | 第18-19页 |
| 1.4.2 免疫组化图像分析 | 第19页 |
| 2 结果统计 | 第19-23页 |
| 2.1 统计学方法 | 第19页 |
| 2.2 VIP 在转录水平的表达 | 第19-21页 |
| 2.3 VIPR1 蛋白的表达 | 第21-22页 |
| 2.4 VIP 在内耳中的免疫组化表达结果 | 第22-23页 |
| 3 讨论 | 第23-26页 |
| 3.1 VIP 生物学功能 | 第23-24页 |
| 3.2 VIP 对微循环的作用 | 第24页 |
| 3.3 慢性酒精中毒对内耳内环境稳定性的影响 | 第24-26页 |
| 第二部分 SP 及其受体在不同程度慢性酒精中毒大鼠内耳的表达差异 | 第26-36页 |
| 1 实验方法 | 第26-30页 |
| 1.1 内耳标本的制备 | 第26页 |
| 1.2 实时荧光定量 PCR | 第26-28页 |
| 1.2.1 Total RNA 的提取 | 第26-27页 |
| 1.2.2 反转录的合成 | 第27-28页 |
| 1.3 Western blotting | 第28-29页 |
| 1.3.1 蛋白抽提 | 第28页 |
| 1.3.2 Western blotting 检测 | 第28-29页 |
| 1.4 免疫组织化学 | 第29-30页 |
| 1.4.1 实验方法 | 第29-30页 |
| 1.4.2 免疫组化图像分析 | 第30页 |
| 2 结果统计 | 第30-34页 |
| 2.1 统计学方法 | 第30页 |
| 2.2 SP 在转录水平的表达 | 第30-31页 |
| 2.3 SPR 蛋白的表达 | 第31-32页 |
| 2.4 SP 在内耳中的免疫组化表达结果 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-36页 |
| 3.1 SP 的生物学功能 | 第34页 |
| 3.2 内耳血管的特点 | 第34-35页 |
| 3.3 内耳微循环 | 第35页 |
| 3.4 慢性酒精中毒对内耳微循环的影响 | 第35-36页 |
| 第三部分 结语 | 第36-38页 |
| 1.全文总结 | 第36页 |
| 2.创新性 | 第36-37页 |
| 3.不足与展望 | 第37-38页 |
| 第四部分 文献综述 | 第38-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 致谢 | 第46-48页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第48-49页 |
