| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9页 |
| 前言 | 第11-35页 |
| 1 问题提出 | 第11-12页 |
| 2 胡萝卜雄性不育性研究及利用进展 | 第12-18页 |
| 2．1 遗传机制 | 第13-14页 |
| 2．2 胡萝卜雄性不育的分子生物学研究 | 第14-15页 |
| 2．3 开花生物学特性 | 第15-16页 |
| 2．4 胡萝卜雄性不育系选育及利用概况 | 第16-18页 |
| 2．5 胡萝卜雄性不育新类型 | 第18页 |
| 3 非对称原生质体融合 | 第18-33页 |
| 3．1 原生质体融合的作用 | 第18页 |
| 3．2 非对称原生质体融合特点—获得非对称杂种或胞质杂种 | 第18-21页 |
| 3．2．1 供体处理 | 第19-20页 |
| 3．2．2 受体的处理 | 第20-21页 |
| 3．3 胡萝卜原生质体非对称融合研究 | 第21-22页 |
| 3．4 其他作物非对称融合研究 | 第22-23页 |
| 3．5 影响非对称融合中染色体丢失的因素 | 第23-31页 |
| 3．5．1 辐射剂量 | 第23-29页 |
| 3．5．2 亲缘关系 | 第29页 |
| 3．5．3 融合亲本和再生杂种的倍性（DNA量） | 第29页 |
| 3．5．4 其它因素 | 第29-31页 |
| 3．6 非对称融合在育种上的潜在价值 | 第31-33页 |
| 3．6．1 转移部分核遗传物质，得到非对称杂种 | 第31-32页 |
| 3．6．2 转移细胞质基因组，得到胞质杂种 | 第32-33页 |
| 4 研究内容 | 第33-35页 |
| 材料和方法 | 第35-43页 |
| 1 材料 | 第35-36页 |
| 2 方法 | 第36-43页 |
| 2．1 胡萝卜愈伤组织的诱导 | 第36页 |
| 2．1．1 以胡萝卜子叶和下胚轴为外植体诱导 | 第36页 |
| 2．1．2 以胡萝卜直根形成层为外植体诱导 | 第36页 |
| 2．2 胡萝卜细胞悬浮系建立 | 第36页 |
| 2．3 原生质体分离与纯化 | 第36-37页 |
| 2．4 X-射线辐射 | 第37页 |
| 2．5 紫外线（UV）辐射 | 第37-38页 |
| 2．6 碘乙酰胺（IOA）处理 | 第38页 |
| 2．7 原生质体活力测定 | 第38页 |
| 2．8 原生质体融合 | 第38页 |
| 2．9 原生质体培养 | 第38-39页 |
| 2．10 再生植株移栽成活 | 第39页 |
| 2．11 染色体数目检查 | 第39页 |
| 2．12 总DNA的提取 | 第39-40页 |
| 2．13 STS_4（Sequence Tagged Site）引物检测胞质基因型 | 第40-41页 |
| 2．14 RAPD引物检测核基因型 | 第41-42页 |
| 2．15 形态学鉴定 | 第42页 |
| 2．16 胡萝卜直根的人工春化 | 第42-43页 |
| 结果与分析 | 第43-103页 |
| 1 胡萝卜原生质体非对称融合基础体系的研究 | 第43-67页 |
| 1．1 外植体对胡萝卜愈伤组织诱导的影响 | 第43页 |
| 1．2 继代培养中愈伤组织的状态及其与基因型的关系 | 第43-44页 |
| 1．3 接种愈伤组织状态与细胞悬浮系培养的关系 | 第44-47页 |
| 1．4 麦芽提取物和谷氨酰胺对胡萝卜细胞悬浮培养的影响 | 第47-49页 |
| 1．5 不同酶液配方原生质体分离产量的比较 | 第49-50页 |
| 1．6 不同酶液配方和酶解时间对原生质体活力的影响 | 第50-51页 |
| 1．7 细胞悬浮系继代不同时期原生质体产量的变化 | 第51页 |
| 1．8 2,4-D对胡萝卜细胞悬浮系状态的调节作用 | 第51-52页 |
| 1．9 分离原生质体的材料对原生质体分离的影响 | 第52-54页 |
| 1．10 细胞悬浮系状态与原生质体再生的关系 | 第54页 |
| 1．11 胡萝卜原生质体培养胚胎和愈伤发生过程的观察 | 第54-55页 |
| 1．12 UV对原生质体活力和再生的影响 | 第55-57页 |
| 1．12．1 UV对原生质体再生的影响 | 第56页 |
| 1．12．2 原生质体UV辐射后再生愈伤组织的生长与植株再生 | 第56-57页 |
| 1．13 UV辐射对愈伤组织生长的影响 | 第57页 |
| 1．14 X-射线对胡萝卜原生质体活力和再生的影响 | 第57-59页 |
| 1．14．1 X-射线对胡萝卜原生质体活力的影响 | 第57-58页 |
| 1．14．2 X-射线对原生质体再生的影响 | 第58-59页 |
| 1．15 IOA对原生质体生长的影响 | 第59页 |
| 1．16 胡萝卜电融合过程的描述 | 第59-60页 |
| 1．17 Ca~（2+）离子浓度对电融合的影响 | 第60-61页 |
| 1．18 融合参数的优化 | 第61页 |
| 1．19 STS_4标记与胡萝卜“瓣化型”不育性相关性研究 | 第61-62页 |
| 1．20 小结 | 第62-67页 |
| 2 胡萝卜原生质体非对称融合与再生 | 第67-78页 |
| 2．1 胡萝卜原生质体非对称融合愈伤和胚状体再生状况 | 第67-70页 |
| 2．2 操作环境温度和基因型对愈伤和胚状体再生的影响 | 第70-71页 |
| 2．3 胡萝卜融合原生质体培养胚胎发生过程的观察 | 第71页 |
| 2．4 胡萝卜融合体的愈伤增殖和植株再生 | 第71-73页 |
| 2．5 再生植株的移栽成活 | 第73-74页 |
| 2．6 小结 | 第74-78页 |
| 3 融合杂种植株的鉴定 | 第78-103页 |
| 3．1 7-0-8-4+66-3组合再生植株的鉴定 | 第78-80页 |
| 3．1．1 再生植株营养生长期形态学鉴定 | 第78页 |
| 3．1．2 再生植株的染色体数目鉴定 | 第78页 |
| 3．1．3 RAPD标记鉴定核基因型 | 第78页 |
| 3．1．4 mtDNA的STS_4标记鉴定 | 第78-80页 |
| 3．1．5 融合植株的花期形态学鉴定 | 第80页 |
| 3．2 7-0-8-2+305-1组合再生植株的鉴定 | 第80-83页 |
| 3．2．1 再生植株的营养生长期鉴定 | 第80-81页 |
| 3．2．2 再生植株及双亲的染色体数目鉴定 | 第81页 |
| 3．2．3 RAPD标记鉴定核基因型 | 第81-82页 |
| 3．2．4 mtDNA的STS_4标记鉴定 | 第82-83页 |
| 3．2．5 融合植株的花期形态学和细胞学鉴定 | 第83页 |
| 3．3 9714f8X1+66-3组合鉴定 | 第83-86页 |
| 3．3．1 再生植株的营养生长期鉴定 | 第83页 |
| 3．3．2 再生植株的染色体数目鉴定 | 第83-84页 |
| 3．3．3 RAPD标记鉴定核基因型 | 第84页 |
| 3．3．4 mtDNA的STS_4标记鉴定 | 第84-85页 |
| 3．3．5 融合再生植株的花期形态学鉴定 | 第85-86页 |
| 3．4 9714f8-1+17-3组合的鉴定 | 第86-88页 |
| 3．4．1 营养生长期的形态学鉴定 | 第86页 |
| 3．4．2 再生植株的染色体数目检查 | 第86页 |
| 3．4．3 再生植株的RAPD鉴定 | 第86-87页 |
| 3．4．4 再生植株mtDNA的STS_4标记鉴定 | 第87-88页 |
| 3．4．5 再生植株花期形态学鉴定 | 第88页 |
| 3．5 组合9714f8-1+169—1和组合9714f8-1+7-z-4-6的鉴定 | 第88-89页 |
| 3．6 小结 | 第89-103页 |
| 讨论 | 第103-114页 |
| 1． 基因型对胡萝卜原生质体非对称融合的影响 | 第103页 |
| 2． 激素对胡萝卜原生质体非对称融合的影响 | 第103-104页 |
| 3． 射线和化学处理的后效应作用 | 第104页 |
| 4． UV射线处理和X-处理效果比较 | 第104-105页 |
| 5． 原生质体材料来源与变异 | 第105-106页 |
| 6． CA~（2+）离子浓度对电融合的影响 | 第106页 |
| 7． 胡萝卜再生植株的移栽成活 | 第106-107页 |
| 8． 原生质体非对称融合转育胡萝卜雄性不育性的可行性 | 第107-108页 |
| 9． 胡萝卜“瓣化型”胞质不育性在再生中的遗传 | 第108-109页 |
| 10． 融合双亲染色体数目差异对融合杂种性质的影响 | 第109页 |
| 11． STS_4标记与胡萝卜瓣化型不育性的相关性 | 第109-110页 |
| 12． 胡萝卜组培中的先期抽薹与人工春化 | 第110-111页 |
| 13． 本研究存在的问题及改进方案 | 第111-112页 |
| 13．1 存在问题 | 第111页 |
| 13．2 改进方案 | 第111-112页 |
| 14． 胡萝卜原生质体非对称融合与胡萝卜资源创新 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-127页 |
| 致谢 | 第127页 |
