| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| AD治疗方法的现状 | 第12-13页 |
| AD与细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 选取指标和测量方法的意义 | 第14页 |
| 研究目的和方法 | 第14-15页 |
| 一、hUCMSC的分离,培养,传代及荧光标记 | 第15-24页 |
| 1.1 材料和方法 | 第15-18页 |
| 1.1.1 材料 | 第15-16页 |
| 1.1.2 方法 | 第16-18页 |
| 1.2 结果 | 第18-19页 |
| 1.2.1 hUCMSC培养,生长结果 | 第18页 |
| 1.2.2 hUCMSC表面抗原检测结果 | 第18页 |
| 1.2.3 hUCMSCDi1荧光标记 | 第18-19页 |
| 1.3 讨论 | 第19-23页 |
| 1.4 小结 | 第23-24页 |
| 二、H102和hUCMSC对AD小鼠行为学及细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第24-61页 |
| 2.1 材料和方法 | 第24-32页 |
| 2.1.1 材料 | 第24-27页 |
| 2.1.2 方法 | 第27-32页 |
| 2.2 结果 | 第32-49页 |
| 2.2.1 水迷宫实验结果 | 第32-36页 |
| 2.2.2 劳光标记结果 | 第36-37页 |
| 2.2.3 免疫组化结果 | 第37-48页 |
| 2.2.4 western bloting结果 | 第48-49页 |
| 2.3 讨论 | 第49-60页 |
| 2.3.1 认知功能的脑结构基础 | 第49-50页 |
| 2.3.2 细胞凋亡的机理 | 第50-52页 |
| 2.3.3 实验中几个指标的意义 | 第52-54页 |
| 2.3.4 AD患者细胞凋亡的机理 | 第54-55页 |
| 2.3.5 Morris水迷宫实验的机理 | 第55-56页 |
| 2.3.6 hUCMSC补充凋亡细胞的机理 | 第56-57页 |
| 2.3.7 H102阻止细胞凋亡的机制 | 第57-60页 |
| 2.4 小结 | 第60-61页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-69页 |
| 综述 | 第69-79页 |
| 综述参考文献 | 第75-79页 |
| 致谢 | 第79页 |