| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-38页 |
| 1.1 VEGF 家族及其受体的研究进展 | 第14-22页 |
| 1.1.1 VEGF家族及其受体的结构 | 第14-19页 |
| 1.1.2 VEGF的功能和作用 | 第19-22页 |
| 1.2 骨再生基因治疗的研究进展 | 第22-38页 |
| 1.2.1 骨再生现有方法的局限性 | 第23页 |
| 1.2.2 骨组织工程的进展 | 第23-38页 |
| 第2章 大鼠骨髓间充质干细胞的体外培养和诱导分化 | 第38-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第38-40页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第38页 |
| 2.1.2 实验主要仪器和试剂 | 第38-39页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第39-40页 |
| 2.2 结果 | 第40-44页 |
| 2.2.1 大鼠BMSCs的培养 | 第40-42页 |
| 2.2.2 大鼠BMSCs成骨诱导培养 | 第42-43页 |
| 2.2.3 大鼠BMSCs成脂诱导培养 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-47页 |
| 第3章 腺病毒介导EGFP 转染大鼠骨髓间充质干细胞的研究 | 第47-52页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47-48页 |
| 3.1.1 实验主要仪器和试剂 | 第47-48页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第48页 |
| 3.2 结果 | 第48-49页 |
| 3.2.1 AdCMV-EGFP转染大鼠BMSCs | 第48-49页 |
| 3.2.2 AdCMV-EGFP转染对大鼠BMSCs钙化结节形成能力的影响 | 第49页 |
| 3.3 讨论 | 第49-52页 |
| 第4章 VEGF 基因转染对大鼠骨髓间充质干细胞增殖的影响 | 第52-61页 |
| 4.1 材料与方法 | 第52-56页 |
| 4.1.1 实验主要仪器及试剂 | 第52-53页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第53-56页 |
| 4.2 结果 | 第56-58页 |
| 4.2.1 转染AdCMV-VEGF后细胞内VEGFmRNA的表达 | 第56-57页 |
| 4.2.2 转染后细胞内VEGF蛋白的表达 | 第57-58页 |
| 4.2.3 转染AdCMV-VEGF对大鼠BMSCs增殖的影响 | 第58页 |
| 4.3 讨论 | 第58-61页 |
| 第5章 VEGF 基因转染对大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化的影响 | 第61-75页 |
| 5.1 材料与方法 | 第61-64页 |
| 5.1.1 实验主要仪器及试剂 | 第61-62页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第62-64页 |
| 5.2 结果 | 第64-69页 |
| 5.2.1 转染后大鼠BMSCs的ALP活性检测 | 第64-65页 |
| 5.2.2 转染后大鼠BMSCs的OCN和COL?分泌蛋白检测 | 第65-67页 |
| 5.2.3 实时荧光定量PCR 检测转染VEGF 对大鼠BMSCs 成骨分化的影响 | 第67-69页 |
| 5.3 讨论 | 第69-75页 |
| 第6章 VEGF 与BMP2 双基因转染的体外研究 | 第75-82页 |
| 6.1 材料与方法 | 第75-76页 |
| 6.1.1 实验主要仪器及试剂 | 第75-76页 |
| 6.1.2 实验方法 | 第76页 |
| 6.2 实验结果 | 第76-79页 |
| 6.2.1 AdCMV-BMP2和AdCMV-VEGF转染大鼠BMSCs的VEGF和BMP2mRNA的表达 | 第76-77页 |
| 6.2.2 AdCMV-BMP2 和AdCMV-VEGF 转染大鼠BMSCs 的VEGF 和BMP2 蛋白的分泌 | 第77-78页 |
| 6.2.3 细胞转染后形态学观察 | 第78-79页 |
| 6.3 讨论 | 第79-82页 |
| 第7章 结论 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-102页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第102-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
