| ABBREVIATION | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-28页 |
| 1 干旱胁迫相关研究进展 | 第11-17页 |
| 1.1 植物在干旱胁迫下的生理表型 | 第11页 |
| 1.2 水稻对干旱胁迫的防御机制 | 第11-17页 |
| 1.2.1 渗透调节机制 | 第11-12页 |
| 1.2.2 抗氧化还原机制 | 第12页 |
| 1.2.3 激素介导的信号调控机制 | 第12-13页 |
| 1.2.4 水稻干旱响应基因的表达调控网络 | 第13-17页 |
| 2 水稻花发育的研究进展 | 第17-24页 |
| 3 干旱胁迫下生殖发育的研究进展 | 第24-26页 |
| 4 ERF家族在干旱胁迫下的功能研究 | 第26-27页 |
| 5 本文的研究内容和研究目的 | 第27-28页 |
| 第二章 干旱胁迫下,水稻生殖器官的形态学和转录组分析 | 第28-57页 |
| 1 材料与方法 | 第28-35页 |
| 1.1 实验材料 | 第28页 |
| 1.2 试剂 | 第28页 |
| 1.3 仪器 | 第28页 |
| 1.4 实验方法 | 第28-35页 |
| 1.4.1 植物培养 | 第28页 |
| 1.4.2 水稻干旱处理 | 第28-29页 |
| 1.4.3 水稻花的收集 | 第29页 |
| 1.4.4 水稻花全基因组芯片 | 第29-31页 |
| 1.4.5 芯片数据分析 | 第31-32页 |
| 1.4.6 芯片数据的qRT-PCR验证 | 第32-34页 |
| 1.4.7 组织切片观察 | 第34-35页 |
| 2 结果与讨论 | 第35-57页 |
| 2.1 花发育分期与花长度的关系 | 第35-36页 |
| 2.2 干旱对生殖发育的影响 | 第36-38页 |
| 2.3 干旱胁迫扰乱了花药中淀粉粒的积累模式 | 第38-41页 |
| 2.4 水稻生殖器官在干旱胁迫下的转录组分析 | 第41-44页 |
| 2.5 干旱应答基因的功能分析 | 第44-48页 |
| 2.6 在正常生长条件和干旱胁迫下的水稻花发育调控基因 | 第48-49页 |
| 2.7 干旱胁迫对减数分裂相关基因的调控 | 第49-50页 |
| 2.8 绒毡层和小孢子母细胞特异表达基因受干旱胁迫的调控 | 第50-51页 |
| 2.9 干旱胁迫对MADS-box基因家族的调控 | 第51-52页 |
| 2.10 干旱胁迫对淀粉粒积累模式的影响 | 第52-54页 |
| 2.11 干旱胁迫下的花中ABA代谢与信号途径 | 第54页 |
| 2.12 干旱胁迫抑制花中GA信号途径 | 第54-56页 |
| 2.13 干旱胁迫对花药发育调控的分子模型 | 第56-57页 |
| 第三章 水稻干旱相关基因的克隆与表型观察 | 第57-80页 |
| 1 材料与方法 | 第57-69页 |
| 1.1 材料 | 第57-59页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第57页 |
| 1.1.2 试剂 | 第57-59页 |
| 1.1.3 菌株与载体 | 第59页 |
| 1.2 实验方法 | 第59-69页 |
| 1.2.1 基因的选取原则 | 第59-60页 |
| 1.2.2 候选基因的拟南芥与水稻突变体的鉴定 | 第60-63页 |
| 1.2.3 分离候选基因片段 | 第63-65页 |
| 1.2.4 目的片段的克隆 | 第65-66页 |
| 1.2.5 转基因水稻或拟南芥植株的获得 | 第66-68页 |
| 1.2.6 转基因水稻或拟南芥植株的鉴定 | 第68页 |
| 1.2.7 胁迫处理条件 | 第68-69页 |
| 2 实验结果 | 第69-78页 |
| 2.1 OsERF相关株系的鉴定 | 第69-71页 |
| 2.1.1 OsERF与拟南芥直系同源基因(At5G13330)相关株系的鉴定 | 第69-70页 |
| 2.1.2 表型鉴定 | 第70-71页 |
| 2.2 3-OAC相关株系的鉴定 | 第71-72页 |
| 2.2.1 3-OAC与拟南芥直系同源基因(At1G24360)相关株系的鉴定 | 第71页 |
| 2.2.3 表型的鉴定 | 第71-72页 |
| 2.3 CAO相关株系的鉴定 | 第72-74页 |
| 2.3.1 CAO与拟南芥直系同源基因(At1G70670)相关株系的鉴定 | 第72-73页 |
| 2.3.2 表型鉴定 | 第73-74页 |
| 2.4 PP2C相关株系的鉴定 | 第74-76页 |
| 2.4.1 PP2C与拟南芥直系同源基因(At2G29380)相关株系的鉴定 | 第74-75页 |
| 2.4.2 表型鉴定 | 第75-76页 |
| 2.5 msp水稻突变体的基因型鉴定 | 第76-77页 |
| 2.6 PARP水稻突变体相关鉴定 | 第77-78页 |
| 2.6.1 parp水稻突变体的基因型鉴定 | 第77页 |
| 2.6.2 表型鉴定 | 第77-78页 |
| 3 小结 | 第78-80页 |
| 第四章 提高干旱胁迫下水稻育性基因OsERF101的功能研究 | 第80-99页 |
| 1 材料与方法 | 第80-86页 |
| 1.1. 实验材料 | 第80页 |
| 1.2 实验试剂 | 第80-82页 |
| 1.3 实验方法 | 第82-86页 |
| 1.3.1 GUS报告基因表达的组织化学染色 | 第82页 |
| 1.3.2 原位杂交 | 第82-84页 |
| 1.3.3 ROS染色 | 第84页 |
| 1.3.4 脯氨酸含量的测定 | 第84页 |
| 1.3.5 过氧化物酶活性测定 | 第84-85页 |
| 1.3.6 超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第85页 |
| 1.3.7 进化树构建 | 第85-86页 |
| 1.3.8 亚细胞定位---农杆菌法侵染洋葱表皮观察eYFP瞬时表达 | 第86页 |
| 2 结果与讨论 | 第86-98页 |
| 2.1 OsERF101在ERF家族中进化关系 | 第86-87页 |
| 2.2 过量表达OsERF101的转基因株系具有耐旱表型 | 第87-91页 |
| 2.2.1 OsERF101突变体、过表达和RNAi转基因株系的RNA水平的鉴定 | 第87-88页 |
| 2.2.2 OsERF101各表达株系在PEG和干旱胁迫下的表型特征 | 第88-89页 |
| 2.2.3 OsERF101各表达株系在干旱胁迫后的抗旱指标的测定 | 第89-90页 |
| 2.2.4 OsERF101各表达株系的花粉粒育性特征 | 第90-91页 |
| 2.3 OsERF101在花药发育中的功能分析 | 第91-93页 |
| 2.4 OsERF101的表达模式 | 第93-95页 |
| 2.5 OsERF101影响的下游基因 | 第95-97页 |
| 2.6 OsERF101的亚细胞定位 | 第97-98页 |
| 3 OsERF101的功能讨论与展望 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-113页 |
| 博士期间已发表与待发表的相关论文 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
