| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 1 前言 | 第9-11页 |
| 2 材料与方法 | 第11-18页 |
| 2.1 RGC-5的来源 | 第11页 |
| 2.2 主要试剂及设备 | 第11-13页 |
| 2.2.1 主要仪器和软件 | 第11-12页 |
| 2.2.2 实验试剂及耗材 | 第12-13页 |
| 2.3 实验方法 | 第13-18页 |
| 2.3.1 RGC-5复苏 | 第13页 |
| 2.3.2 RGC-5传代 | 第13页 |
| 2.3.3 配制不同浓度的知母皂甙B-Ⅱ | 第13-14页 |
| 2.3.4 RGC-5氧化损伤模型的建立以及细胞分组 | 第14页 |
| 2.3.5 MTT细胞增殖-毒性试剂盒检测RGC-5增殖活性 | 第14-15页 |
| 2.3.6 微量丙二醇(MDA)测试RGC-5含量 | 第15页 |
| 2.3.7 流式细胞术检测RGC-5程序性坏死 | 第15-16页 |
| 2.3.8 ELISA方法检测RGC-5上清液中TNF-α含量 | 第16-17页 |
| 2.3.9 数据收集和统计分析 | 第17-18页 |
| 3 结果 | 第18-24页 |
| 3.1 各组细胞的形态学特征 | 第18-20页 |
| 3.2 各组细胞的MTT结果 | 第20页 |
| 3.3 各组细胞的MDA含量 | 第20-21页 |
| 3.4 RGC-5程序性坏死的流式检测 | 第21-22页 |
| 3.5 各组细胞的TNF-α含量 | 第22-24页 |
| 4 讨论 | 第24-27页 |
| 4.1 采用RGC-5作为神经元氧化损伤模型的细胞 | 第24页 |
| 4.2 知母皂甙B-Ⅱ具有抗氧化应激作用 | 第24-26页 |
| 4.3 知母皂甙B-Ⅱ减少RGC-5早期程序性坏死可能与降低TNF-α有关 | 第26-27页 |
| 5 结论 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-33页 |
| 综述 | 第33-48页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及科研工作情况 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49页 |
