| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 常见英文缩写一览表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-33页 |
| 1.1 植物对磷元素的营养性 | 第13-15页 |
| 1.1.1 磷元素对植物生长发育的影响 | 第13页 |
| 1.1.2 当今磷资源的利用状况 | 第13-15页 |
| 1.2 植物对低磷胁迫的响应 | 第15-18页 |
| 1.2.1 植物对低磷环境的适应机制 | 第15页 |
| 1.2.2 低磷环境对植物根系形态的影响 | 第15-17页 |
| 1.2.3 低磷环境对植物根系分泌物的影响 | 第17-18页 |
| 1.3 植物紫色酸性磷酸酶研究进展 | 第18-24页 |
| 1.3.1 紫色酸性磷酸酶概述 | 第18-20页 |
| 1.3.2 紫色酸性磷酸酶分类 | 第20-21页 |
| 1.3.3 模式生物拟南芥中紫色酸性磷酸酶的研究 | 第21-22页 |
| 1.3.4 甘蓝型油菜中紫色酸性磷酸酶的研究 | 第22-24页 |
| 1.4 甘蓝型油菜基因组测序工作完成 | 第24-25页 |
| 1.5 生物信息学的发展 | 第25-30页 |
| 1.5.1 生物信息学概述 | 第25-26页 |
| 1.5.2 生物信息学的发展阶段及方向 | 第26-27页 |
| 1.5.3 生物信息学的应用 | 第27-28页 |
| 1.5.4 生物信息学数据库 | 第28-30页 |
| 1.6 实时荧光定量PCR分析基因表达的研究进展 | 第30-31页 |
| 1.6.1 实时荧光定量PCR概述 | 第30页 |
| 1.6.2 实时荧光定量PCR的定量方法 | 第30-31页 |
| 1.7 研究目的和意义 | 第31-33页 |
| 2 油菜BnaA03g59200D、BnaC07g51090D与AtPAP6蛋白的生物信息学分析 | 第33-50页 |
| 2.1 蛋白质序列来源及生物信息学分析方法 | 第33-34页 |
| 2.1.1 蛋白质序列来源 | 第33页 |
| 2.1.2 生物信息学数据库及分析方法 | 第33-34页 |
| 2.2 结果与分析 | 第34-48页 |
| 2.2.1 BnaA03g59200D与BnaC07g51090D蛋白的BLASTP比对 | 第34页 |
| 2.2.2 构建系统发育进化树 | 第34-35页 |
| 2.2.3 BnaA03g59200D、BnaC07g51090D与AtPAP6蛋白的理化性质分析 | 第35页 |
| 2.2.4 亲水性/疏水性比较分析 | 第35-37页 |
| 2.2.5 信号肽及亚细胞定位预测 | 第37-39页 |
| 2.2.6 BnaA03g59200D、BnaC07g51090D与AtPAP6蛋白二级结构预测 | 第39-40页 |
| 2.2.7 蛋白质跨膜结构预测 | 第40-42页 |
| 2.2.8 蛋白质螺旋卷曲结构预测 | 第42-43页 |
| 2.2.9 蛋白质的潜在磷酸化位点及N-糖基化位点预测 | 第43-45页 |
| 2.2.10 保守结构域分析 | 第45-46页 |
| 2.2.11 BnaA03g59200D、BnaC07g51090D与AtPAP6蛋白三级结构预测 | 第46-48页 |
| 2.2.12 BnaA03g59200D、BnaC07g51090D与AtPAP6蛋白模体及功能位点预测 | 第48页 |
| 2.3 讨论 | 第48-50页 |
| 3 实时荧光定量PCR技术探讨这两个基因响应磷饥饿诱导的表达分析 | 第50-63页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第50-56页 |
| 3.1.1 实验材料及培养条件 | 第50页 |
| 3.1.2 实验仪器和设备 | 第50-51页 |
| 3.1.3 实验器皿准备 | 第51页 |
| 3.1.4 试剂及试剂盒 | 第51-52页 |
| 3.1.5 实验材料磷饥饿诱导处理 | 第52页 |
| 3.1.6 磷饥饿诱导甘蓝型油菜幼苗嫩叶和根部总RNA的提取 | 第52页 |
| 3.1.7 提取总RNA的纯度检测 | 第52-53页 |
| 3.1.8 总RNA的琼脂糖凝胶电泳分析 | 第53页 |
| 3.1.9 总RNA反转录反应 | 第53-54页 |
| 3.1.10 内参基因的选取和引物设计 | 第54-55页 |
| 3.1.11 普通PCR扩增目的基因检测引物特异性 | 第55页 |
| 3.1.12 实时荧光定量PCR检测BnaA03g59200D与BnaC07g51090D在根部和嫩叶中的表达模式 | 第55-56页 |
| 3.2 结果与分析 | 第56-61页 |
| 3.2.1 总RNA的纯度检测 | 第56页 |
| 3.2.2 总RNA的琼脂糖凝胶电泳结果 | 第56-57页 |
| 3.2.3 目的基因特异性检测 | 第57-58页 |
| 3.2.4 BnaA03g59200D与BnaC07g51090D基因实时荧光定量PCR可靠性分析 | 第58-59页 |
| 3.2.5 实时荧光定量PCR检测BnaA03g59200D和BnaC07g51090D基因表达量 | 第59-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-63页 |
| 3.3.1 BnaA03g59200D和BnaC07g51090D基因响应磷饥饿诱导的表达分析 | 第61页 |
| 3.3.2 总RNA提取及实时荧光定量PCR技术检测基因表达量注意事项 | 第61-63页 |
| 4 小结与展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 附录 | 第75-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文和研究成果 | 第80页 |
