| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第15-21页 |
| 1.1 水温与鱼类的关系 | 第15页 |
| 1.2 低温胁迫对鱼类的影响 | 第15-19页 |
| 1.2.1 研究鱼类低温胁迫的意义 | 第15页 |
| 1.2.2 鱼类致死低温的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2.3 鱼类应对低温刺激的反应 | 第16-18页 |
| 1.2.4 鱼类Hsp70的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3 本研究的主要目的与意义 | 第19-21页 |
| 第二章 黄姑鱼半致死低温的研究及低温胁迫对黄姑鱼行为表现和组织学指标的影响 | 第21-26页 |
| 2.1 材料和方法 | 第21-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第21-22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-24页 |
| 2.2.1 行为表现及半致死温度 | 第22-23页 |
| 2.2.2 组织学变化 | 第23-24页 |
| 2.3 讨论 | 第24-25页 |
| 2.4 小结 | 第25-26页 |
| 第三章 低温胁迫对黄姑鱼相关生理生化指标的影响 | 第26-32页 |
| 3.1 材料与方法 | 第26-27页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 3.1.3 数据分析 | 第27页 |
| 3.2 结果 | 第27-30页 |
| 3.2.1 不同温度处理的黄姑鱼组织的SOD酶活力比较 | 第27-28页 |
| 3.2.2 不同温度处理的黄姑鱼组织中CAT酶活力比较 | 第28-30页 |
| 3.2.3 不同温度处理黄姑鱼的肌肉中Na~+/-K~+-ATP酶活力比较 | 第30页 |
| 3.3 讨论 | 第30-31页 |
| 3.3.1 低温胁迫对黄姑鱼抗氧化酶活性的影响 | 第30-31页 |
| 3.3.2 低温胁迫对黄姑鱼肌肉中Na~+/-K~+-ATPase活力的影响 | 第31页 |
| 3.4 小结 | 第31-32页 |
| 第四章 黄姑鱼耐低温相关基因Hsp70在低温胁迫前后的表达差异 | 第32-50页 |
| 4.1 材料与方法 | 第32-40页 |
| 4.1.1 材料 | 第32-34页 |
| 4.1.2 实验流程 | 第34-35页 |
| 4.1.3 基因克隆 | 第35-39页 |
| 4.1.4 组织间差异表达分析 | 第39页 |
| 4.1.5 低温胁迫下差异表达分析 | 第39-40页 |
| 4.2 结果与分析 | 第40-46页 |
| 4.2.1 总RNA的提取 | 第40-41页 |
| 4.2.2 黄姑鱼Hsp70 cDNA核心序列 | 第41-42页 |
| 4.2.3 序列分析及同源性比较 | 第42-44页 |
| 4.2.4 蛋白结构和功能的预测 | 第44-45页 |
| 4.2.5 黄姑鱼Hsp70基因的组织表达差异 | 第45页 |
| 4.2.6 黄姑鱼Hsp70基因在低温胁迫下差异表达分析 | 第45-46页 |
| 4.2.7 不同温度处理的黄姑鱼肌肉中Hsp70蛋白含量比较 | 第46页 |
| 4.3 讨论 | 第46-49页 |
| 4.3.1 黄姑鱼Hsp70 cDNA的分离及其序列分析 | 第46-47页 |
| 4.3.2 黄姑鱼Hsp70 cDNA的空间表达 | 第47-48页 |
| 4.3.3 低温胁迫对黄姑鱼Hsp70基因和蛋白表达水平的影响 | 第48-49页 |
| 4.4 小结 | 第49-50页 |
| 主要研究结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第60页 |
