| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 本文所用英文缩写词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 生物分析技术 | 第13-14页 |
| 1.2 核酸稳定的荧光金属纳米材料 | 第14-17页 |
| 1.2.1 荧光金纳米簇 | 第15-16页 |
| 1.2.2 荧光银纳米簇 | 第16-17页 |
| 1.3 核酸稳定的荧光铜纳米颗粒 | 第17-19页 |
| 1.3.1 核酸稳定荧光铜纳米颗粒的合成及分类 | 第17-19页 |
| 1.3.2 核酸稳定荧光铜纳米颗粒的性质 | 第19页 |
| 1.4 核酸稳定荧光铜纳米颗粒的生物分析应用 | 第19-28页 |
| 1.4.1 双链DNA稳定荧光铜纳米颗粒的生物分析应用 | 第19-23页 |
| 1.4.2 单链poly T稳定荧光铜纳米颗粒的生物分析应用 | 第23-28页 |
| 1.5 本论文拟开展的研究工作 | 第28-31页 |
| 第2章 “超长”poly T稳定荧光铜纳米颗粒用于DNase Ⅰ的免标记和灵敏分析研究 | 第31-42页 |
| 2.1 前言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验部分 | 第32-34页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第32-34页 |
| 2.2.2 DNase Ⅰ降解引物DNA | 第34页 |
| 2.2.3 TdT催化聚合“超长”poly T | 第34页 |
| 2.2.4 以“超长”poly T为模板合成荧光铜纳米颗粒 | 第34页 |
| 2.2.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳表征 | 第34页 |
| 2.2.6 荧光铜纳米颗粒的形貌大小表征 | 第34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-41页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第34-35页 |
| 2.3.2 TdT-superlong poly T-CuNPs用于DNase Ⅰ检测可行性考察 | 第35-38页 |
| 2.3.3 TdT-superlong poly T-CuNPs用于DNase Ⅰ检测的条件优化 | 第38-39页 |
| 2.3.4 TdT-superlong poly T-CuNPs用于DNaseⅠ检测的灵敏度和选择性考察 | 第39-41页 |
| 2.3.5 复杂生物样本中DNase Ⅰ的检测 | 第41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 第3章 “超长”poly T稳定荧光铜纳米颗粒结合氧化石墨烯用于miRNA的免标记循环放大检测研究 | 第42-58页 |
| 3.1 前言 | 第42-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-46页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.2 GO对DNA单链和DNA/RNA双链的区分 | 第45-46页 |
| 3.2.3 DNase Ⅰ降解DNA释放RNA(循环放大) | 第46页 |
| 3.2.4 离心去除GO取上清液 | 第46页 |
| 3.2.5 TdT催化聚合形成“超长”poly T序列 | 第46页 |
| 3.2.6 以“超长”poly T为模板合成荧光铜纳米颗粒 | 第46页 |
| 3.2.7 荧光铜纳米颗粒的形貌大小表征 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-57页 |
| 3.3.1 氧化石墨烯对TdT延伸引物DNA的吸附作用探讨 | 第46-49页 |
| 3.3.2 “超长”poly T稳定荧光铜纳米颗粒结合氧化石墨烯用于miRNA的免标记循环放大检测设计原理 | 第49-51页 |
| 3.3.3 miRNA免标记循环放大检测策略的可行性 | 第51-53页 |
| 3.3.4 miRNA免标记循环放大检测条件优化 | 第53-55页 |
| 3.3.5 miRNA免标记循环放大检测灵敏度和选择性考察 | 第55-57页 |
| 3.4 小结 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-72页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
