| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 水体氮污染的来源及危害 | 第12-13页 |
| 1.2 传统生物脱氮工艺 | 第13-14页 |
| 1.3 新型生物脱氮工艺 | 第14-22页 |
| 1.3.1 短程硝化反硝化 | 第14-16页 |
| 1.3.2 厌氧氨氧化 | 第16-17页 |
| 1.3.3 好氧反硝化 | 第17-22页 |
| 1.4 本研究目的意义及主要内容 | 第22-24页 |
| 1.4.1 课题来源 | 第22页 |
| 1.4.2 目的与意义 | 第22-23页 |
| 1.4.3 主要研究内容 | 第23-24页 |
| 第2章 好氧反硝化菌的分离筛选 | 第24-34页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1.1 接种物来源 | 第24页 |
| 2.1.2 培养基 | 第24页 |
| 2.1.3 主要药品及器材 | 第24-26页 |
| 2.1.4 分析方法 | 第26-27页 |
| 2.2 好氧反硝化菌的分离筛选 | 第27-33页 |
| 2.2.1 好氧反硝化菌的富集与初筛 | 第27-28页 |
| 2.2.2 好氧反硝化菌的初筛结果 | 第28-29页 |
| 2.2.3 好氧反硝化菌的复筛 | 第29页 |
| 2.2.4 好氧反硝化菌的复筛结果 | 第29-33页 |
| 2.3 本章小结 | 第33-34页 |
| 第3章 好氧反硝化菌的鉴定及脱氮性能研究 | 第34-52页 |
| 3.1 ADM 2-2、ADM 7-2、ADM 8-1的16S rDNA序列分析 | 第34-38页 |
| 3.1.1 菌株的初步鉴定 | 第34页 |
| 3.1.2 菌株DNA的提取 | 第34-35页 |
| 3.1.3 PCR扩增 | 第35-36页 |
| 3.1.4 琼脂糖凝胶电泳 | 第36页 |
| 3.1.5 16S rDNA测序 | 第36-37页 |
| 3.1.6 菌株的初步鉴定结果 | 第37页 |
| 3.1.7 琼脂糖凝胶电泳图 | 第37页 |
| 3.1.8 16S rDNA测序结果 | 第37-38页 |
| 3.2 好氧反硝化菌株ADM 2-2、ADM 8-1的脱氮性能研究 | 第38-40页 |
| 3.2.1 菌株好氧反硝化性能测定 | 第38页 |
| 3.2.2 菌株利用亚硝酸盐氮和氨氮性能测定 | 第38-39页 |
| 3.2.3 菌株好氧反硝化性能测定结果 | 第39页 |
| 3.2.4 菌株利用亚硝酸盐氮和氨氮性能测定结果 | 第39-40页 |
| 3.3 培养条件对菌株ADM 2-2、ADM 8-1好氧反硝化的影响 | 第40-51页 |
| 3.3.1 pH值的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.2 碳源的影响 | 第41页 |
| 3.3.3 C/N的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.4 NaCl浓度的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.5 pH值的影响结果 | 第43-45页 |
| 3.3.6 碳源的影响结果 | 第45-47页 |
| 3.3.7 C/N的影响结果 | 第47-49页 |
| 3.3.8 NaCl浓度的影响结果 | 第49-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第4章 好氧反硝化菌强化SBR反应器的反硝化性能研究 | 第52-68页 |
| 4.1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 4.1.1 反应装置 | 第52-53页 |
| 4.1.2 进水水质与接种污泥 | 第53页 |
| 4.1.3 反应器运行方法 | 第53-54页 |
| 4.2 SBR反应器的好氧反硝化效果分析 | 第54-61页 |
| 4.2.1 NO_3~-N的去除情况 | 第54-56页 |
| 4.2.2 NO_2~-N的积累情况 | 第56-57页 |
| 4.2.3 COD的去除情况 | 第57-59页 |
| 4.2.4 MLSS及菌液浓度的变化 | 第59-61页 |
| 4.3 SBR内微生物群落结构分析 | 第61-67页 |
| 4.3.1 样品采集 | 第61-62页 |
| 4.3.2 MiSeq高通量测序 | 第62-64页 |
| 4.3.3 琼脂糖凝胶电泳图 | 第64-65页 |
| 4.3.4 微生物群落结构分析 | 第65-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第5章 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 作者简介 | 第74页 |
